Spis treści

W świetle licznych badań dotyczących niekorzystnego odległego wpływu niedoboru żelaza na rozwój psychoruchowy niemowląt i małych dzieci należy położyć nacisk na działania prewencyjne i długofalowe monitorowanie skuteczności leczenia niedokrwistości.

Wprowadzenie

Okres intensywnego rozwoju w pierwszych latach życia dziecka stawia znaczne wymagania pod względem dostarczania odpowiedniej ilości składników odżywczych. Patofizjologiczne podstawy metabolizmu żelaza w okresie niemowlęcym i wczesnego

dzieciństwa wytyczają kierunki działania. Zapobieganie niedoborowi żelaza i prawidłowe leczenie niedokrwistości z niedoboru żelaza pozwalają uniknąć odległych niekorzystnych następstw choroby i umożliwiają prawidłowy rozwój psychomotoryczny dzieci.

Zasoby żelaza

Zasoby żelaza zgromadzone w okresie płodowym są wprost proporcjonalne do czasu trwania ciąży i masy ciała dziecka. Ocenia się, że u zdrowego, urodzonego o czasie noworodka wynoszą 75 mg/kg masy ciała, w tym około 80% żelaza ustrojowego zawiera hemoglobina (Hb). 1 Zrozumiałe zatem jest, że skrócony czas trwania ciąży lub inne patologie tego okresu mają wpływ na status żelaza u dziecka. Udowodniono ponadto związek przyczynowy między suplementacją żelaza u niemowląt z niedoborem tego pierwiastka a poprawą rozwoju ruchowego w zakresie dużej motoryki i integralności układu nerwowego (kontroli behawioralnej, ruchowej i opanowywania nowych umiejętności) w wieku 9 miesięcy. Uzupełnianie niedoborów u matek w ciąży redukowało niedobór żelaza i częstość występowania niedokrwistości u kobiet, ale miało niewielki wpływ na status żelaza u noworodka. 2 Równie istotny jak wywiad ciążowy jest wczesny okres po urodzeniu i dieta dziecka z rekomendowanym obecnie wyłącznym karmieniem piersią przez pierwszych 6 miesięcy życia. 3, 4 W badaniu Maguire’a i wsp. u dzieci w wieku 36 miesięcy stwierdzono statystycznie znamienny związek między przedłużonym karmieniem pokarmem kobiecym a obniżonym stężeniem ferrytyny. Oceniono, że z każdym dodatkowym miesiącem karmienia piersią ryzyko niedoboru żelaza wzrasta o 4,8%. 5

Grupy ryzyka niedoboru żelaza

Tabela 1. Czynniki ryzyka niedoboru żelaza i niedokrwistości z niedoboru żelaza u niemowląt i małych dzieci1,4-7,9,10

Tabela 1. Czynniki ryzyka niedoboru żelaza i niedokrwistości z niedoboru żelaza u niemowląt i małych dzieci1,4-7,9,10

Rekomendacje amerykańskie (American Academy od Pediatrics [AAP] z 2010 roku oraz US Preventive Services Task Force z 2015 roku) i europejskie (European Society of Pediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition [ESPGHAN] z 2014 roku) zwracają uwagę przede wszystkim na grupy ryzyka niedoboru żelaza bez wskazywania na potrzebę powszechnej suplementacji tego pierwiastka, ale nie ma zgodności w kwestii badań przesiewowych w kierunku niedokrwistości i wieku, w którym należy je wykonać. 4, 6, 7 Decyzję o suplementacji żelaza należy podjąć na podstawie oceny ryzyka niedoboru żelaza (dawka profilaktyczna w grupach zwiększonego ryzyka) lub wyników badań dodatkowych stwierdzających niedokrwistość (dawka lecznicza). W ocenie ryzyka niedoboru żelaza równie istotne są wywiad dotyczący zarówno okresu prekoncepcyjnego, prenatalnego, jak i adaptacyjnego z jego zaburzeniami oraz aktualne, indywidualne potrzeby noworodka, niemowlęcia i małego dziecka. Stężenie hemoglobiny po urodzeniu może być prawidłowe, co jednak w przypadku dzieci z grup zwiększonego ryzyka niedoboru nie koreluje z zasobami żelaza. Pierwsze dwa lata życia z intensywnym wzrostem i rozwojem powinny być przedmiotem szczególnej uwagi, ponieważ właśnie wtedy istnieją możliwości interwencji i zapobiegania odległym skutkom niedoborów składników odżywczych. W tabeli 1 przedstawiono grupy ryzyka niedoboru żelaza. Należy podkreślić, że współwystępowanie kilku czynników ryzyka wymaga szczególnej czujności, wykonania badań laboratoryjnych i indywidualnego schematu wizyt kontrolnych, ponieważ u pacjentów z tej grupy najczęściej wcześnie powstaje niedokrwistość. 8

Profilaktyka niedoboru żelaza i leczenie niedokrwistości

Zaleca się profilaktyczne podawanie preparatu żelaza w dawce 2 mg/kg m.c./24 h u dzieci karmionych pokarmem kobiecym od 3 miesiąca życia (u dzieci urodzonych przedwcześnie od 2-4 tygodnia życia) do 12 miesiąca życia. Mieszanki początkowe przy założeniu karmienia w ilości 150 ml/kg/ 24 h zapewniają podaż żelaza wynoszącą około 1 mg/kg/24 h. Według rekomendacji amerykańskich i europejskich nie ma wskazań do suplementacji żelaza urodzonych o czasie niemowląt karmionych mieszankami początkowymi. W przypadku niedokrwistości z niedoboru żelaza dawka lecznicza wynosi 4-6 mg/kg m.c./24 h w 2-3 dawkach podzielonych. 3, 4, 6, 8, 9, 10 Z doświadczeń własnych wiadomo, że stopniowe zwiększanie dawki leczniczej (np. co 2-3 dni o 1 mg/kg/24 h) poprawia tolerancję preparatu żelaza. Preparaty żelaza obecnie dostępne w sprzedaży zawierają żelazo elementarne, żelazo w postaci kompleksu wodorotlenku żelaza (trójwartościowe) i poliizomaltozy lub żelazo mikrokapsułkowane w postaci pirofosforanu żelaza (trójwartościowe). Podawanie jednocześnie preparatów witamin krwiotwórczych (witamina C, B6, kwas foliowy) zwiększa skuteczność leczenia niedokrwistości. Najczęściej zalecane dawki dobowe kwasu foliowego wynoszą 50-60 µg/kg, według innych autorów u dzieci urodzonych przedwcześnie i/lub z małą masą urodzeniową powinno się podawać od 100 µg do 2,5 mg kwasu foliowego/24 h. Dawki witaminy B6 (pirydoksyny) stosowane w niedokrwistości syderoblastycznej wynoszą 50-200 mg/ 24 h. U niemowląt i małych dzieci z niedokrwistością z niedoboru żelaza najczęściej podaje się 12,5-25 mg pirydoksyny/24 h. Witamina C (kwas askorbinowy) w dawce 25-75 mg/24 h u dorosłego zwiększa przyswajanie żelaza hemowego. Według ESPGHAN ilość witaminy C podawanej dzieciom urodzonym przedwcześnie powinna wynosić 11-46 mg/kg/24 h. 11, 12 Podaż witamin krwiotwórczych łącznie z preparatem żelaza dodatkowo zapobiega pogłębianiu niedoboru tych kofaktorów zużywanych podczas erytropoezy. U zdrowych dzieci urodzonych o czasie zapasy żelaza zgromadzone w życiu płodowym wystarczają do 4-6 miesiąca życia. 1, 6, 8, 10, 13 Od 6 miesiąca życia dzieci powinny otrzymywać w diecie pokarmy bogate w żelazo, co przy prawidłowej tolerancji rozszerzania diety pokrywa zapotrzebowanie na żelazo i witaminy w diecie u niemowląt urodzonych o czasie. U 14% dzieci urodzonych przedwcześnie karmionych mieszanką mleczną stwierdzano niedobór żelaza w wieku 4-8 miesięcy, wobec czego korzystniejsze dla uzyskania dodatniego bilansu żelaza w organizmie wydaje się kontynuowanie suplementacji żelaza do 12 miesiąca życia w tej grupie pacjentów. 8

Badania kontrolne, parametry laboratoryjne w ocenie statusu żelaza i monitorowanie skuteczności leczenia

Przy sprzecznych rekomendacjach i różnicach stanowisk AAP, WHO i ESPGHAN co do wykonywania badań w kierunku niedoboru żelaza i niedokrwistości z niedoboru żelaza należy zwrócić uwagę na zgodność opinii dotyczących wywiadu oraz odrębności skriningu populacyjnego i selektywnego. O ile skrining populacyjny, czyli wykonanie morfologii krwi, najczęściej proponuje się w wieku około 12 miesięcy (AAP i WHO), to w przypadku dzieci z grup zwiększonego ryzyka (skrining selektywny) zaleca się wykonanie badań zawsze wtedy, gdy występują niepokojące objawy lub stwierdza się dodatkowe czynniki ryzyka niedokrwistości (np. trudności w karmieniu, małe przyrosty masy ciała, nieadekwatną do potrzeb podaż żelaza w diecie). 6, 7, 9 W wywiadzie poza uwzględnieniem wcześniactwa, małej urodzeniowej masy ciała, rodzaju diety, chorób przewlekłych należy zapytać o rodzinne występowanie niedokrwistości i pochodzenie etniczne dziecka (inne przyczyny niedokrwistości mikrocytarnej poza niedoborem żelaza to między innymi talasemia). Wśród wskaźników biochemicznych w ocenie metabolizmu żelaza na szczególną uwagę zasługuje stężenie ferrytyny, które odzwierciedla zasoby żelaza w organizmie. Stężenie ferrytyny ≤10-12 µg/l jednoznacznie wskazuje na niedobór żelaza. Baker i wsp., przedstawiając stanowisko AAP, podkreślają, że ferrytyna jest białkiem ostrej fazy, więc podczas zakażenia nie nadaje się do oceny metabolizmu żelaza (poza morfologią krwi i stężeniem ferrytyny zalecają oznaczenie stężenia białka C-reaktywnego w celu wykluczenia stanu zapalnego). 6 Z uwagi na dość ograniczoną możliwość oznaczania ferrytyny w praktyce ambulatoryjnej warto pamiętać o parametrach czerwonokrwinkowych (w tym średniej objętości krwinki czerwonej [MCV]) i liczbie retikulocytów. Sazawal i wsp. potwierdzili także korelację obniżonego stężenia Hb ≤10,0 g/dl i podwyższonego RDW (red cell distribution width; wskaźnik anizocytozy) >15% z biochemicznymi parametrami niedoboru żelaza (w tym obniżonym stężeniem ferrytyny) u dzieci w wieku 1-3 lat, co wskazuje na możliwość wykorzystania tych dwóch parametrów w rozpoznawaniu niedokrwistości z niedoboru żelaza. 14 W kohortowym badaniu prospektywnym Ullrich i wsp. oceniali stężenie hemoglobiny w retikulocytach (CHr – reticulocyte hemoglobin content) w grupie zdrowych dzieci w wieku 9-12 miesięcy. Parametr CHr odzwierciedla dostępność żelaza dla retikulocytów w szpiku kostnym, czyli w czasie 3-4 dni przed wykonaniem oznaczenia. Wartości CHr <27,5 pg jeszcze przed obniżeniem się stężenia Hb wskazywały na niedobór żelaza, co pozwoliło na wyodrębnienie grupy dzieci zagrożonych niedokrwistością. 15 Parametr ten jest już dostępny w niektórych automatach hematologicznych.

Obowiązuje indywidualny schemat badań u niemowląt i dzieci leczonych z powodu niedokrwistości. Pierwsze badania kontrolne z morfologią krwi i oceną liczby retikulocytów należy wykonać nie wcześniej niż po 10 dniach od rozpoczęcia leczenia preparatem żelaza. Zwiększenie stężenia hemoglobiny (średnio o 1-2 g/dl w ciągu 10 dni) oraz wzrost liczby retikulocytów wskazują na prawidłowe rozpoznanie niedokrwistości z niedoboru żelaza i skuteczne leczenie. W praktyce klinicznej szczególnie przydatne jest kilkakrotne oznaczenie stężenia ferrytyny. Wykonane przed rozpoczęciem leczenia i przed decyzją o zakończeniu podaży preparatu żelaza pozwala ocenić przebieg leczenia oraz uniknąć przedwczesnego jego odstawienia, utrzymywania się tkankowego niedoboru żelaza i ponownego wystąpienia niedokrwistości. Po wyrównaniu stężenia hemoglobiny standardowo zaleca się kontynuację leczenia żelazem u dzieci urodzonych o czasie przez 6-8 tygodni, a u urodzonych przedwcześnie przez około 3 miesiące. 16 Przy dobrej tolerancji leczenia nie ma potrzeby częstego wykonywania kontrolnej morfologii, ale należy poinformować opiekunów dziecka o zasadności długotrwałej podaży preparatu żelaza aż do uzupełnienia zapasów tego pierwiastka w organizmie oraz o konieczności zwiększania na bieżąco dawki leku stosownie do aktualnej masy ciała dziecka – zwłaszcza u szybko rosnących niemowląt.

Podsumowanie

Na podstawie znanych czynników zwiększonego ryzyka niedoboru żelaza można z dużym prawdopodobieństwem rozpoznać grupę niemowląt i małych dzieci, u których należy rozpocząć podaż preparatu żelaza w dawce profilaktycznej. Pilotażowe badanie MacQueen i wsp. z oznaczeniami biochemicznych parametrów metabolizmu żelaza we krwi pępowinowej noworodków z grup ryzyka (cukrzyca u matek, noworodki za małe w stosunku do wieku ciążowego [SGA], z bardzo małą masą urodzeniową [VLBW]) wykazało u 12% tych dzieci cechy niedoboru żelaza już po urodzeniu (obniżenie stężenia ferrytyny i żelaza, podwyższenie stężenia rozpuszczalnego receptora transferynowego) bez obniżenia stężenia hemoglobiny. 17 Wyniki te są spójne z dotychczasowymi doniesieniami i doświadczeniami własnymi. Pozwalają także na właściwą argumentację podczas rozmów z opiekunami niemowląt, ponieważ niejednokrotnie trudno uzasadnić konieczność włączenia leku mimo prawidłowych wartości stężenia hemoglobiny i długotrwałej podaży żelaza do ukończenia 1 roku życia. Niedokrwistość jest bardzo późno występującym objawem ciężkiego niedoboru żelaza. W świetle licznych badań dotyczących niekorzystnego odległego wpływu niedoboru żelaza na rozwój psychoruchowy niemowląt i małych dzieci należy położyć nacisk na działania prewencyjne i długofalowe monitorowanie skuteczności leczenia niedokrwistości.

Abstract

Prevention of iron deficiency and treatment of iron deficiency anaemia in infants and toddlers

Children in the first years of life need optimized nutrition to match the intensive growth and increased demands of their developing bodies. The pathophysiological basis of iron metabolism in infants and toddlers holds clues to improving long-term iron status and treating iron-deficiency anemia in the early postnatal period. Neurodevelopmental outcomes are related to efforts undertaken to implement appropriate prevention and treatment of iron deficiency.

Piśmiennictwo
  1. 1. De Alarcón PA, Werner EJ, Christensen RD (eds.). Neonatal Hematology. Pathogenesis, Diagnosis, and Management of Hematologic Problems. Cambridge University Press 2013.
  2. 2. Anguloso-Barroso RM, Li M, Santos DC, et al. Iron supplementation in pregnancy or infancy and motor development: a randomized controlled trial. Pediatrics 2016; 137 (4): e20153547.
  3. 3. Szajewska H, Horvath A, Rybak A, et al. Karmienie piersią. Stanowisko Polskiego Towarzystwa Gastroenterologii, Hepatologii i Żywienia Dzieci. Standardy Medyczne Pediatria 2016;13:9-24.
  4. 4. Domellöf M, Braegger C, Campoy C, et al. ESPGHAN Committee on Nutrition. Iron requirements of infants and toddlers. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2014;58:119-29.
  5. 5. Maguire JL, Salehi L, Birken CS, et al. on behalf of the TARGet Kids! Collaboration. Association between total duration of breastfeeding and iron deficiency. Pediatrics 2013;131:e1530-e1537.
  6. 6. Baker RD, Greer FR. Committee on Nutrition American Academy of Pediatrics. Diagnosis and prevention of iron deficiency and iron-deficiency anemia in infants and young children (0-3 years of age). Pediatrics 2010;126(5):1040-50.
  7. 7. Siu AL, on behalf of the US Preventive Services Task Force. Screening for iron deficiency anemia in young children: USPSTF recommendation statement. Pediatrics 2015;136:746.
  8. 8. Pleskaczyńska A, Dobrzańska A. Noworodki urodzone przedwcześnie – żelazo. W: Suplementacja diety. Wytyczne postępowania u dzieci, kobiet ciężarnych i karmiących piersią. Dobrzańska A, Obrycki Ł, Socha P (red.). Wydawnictwo Media-Press, Warszawa 2015.
  9. 9. Burke RM, Leo JS, Suchdev PS. Identification, prevention and treatment of iron deficiency during the first 1000 days. Nutrients 2014;6:4093-114.
  10. 10. Pleskaczyńska A, Dobrzańska A. Niedobór żelaza i niedokrwistość u noworodków i niemowląt – praktyczne aspekty podstaw metabolizmu żelaza. Postępy Neonatologii 2014;2:63-7.
  11. 11. Gołębiowska-Staroszczyk S, Matysiak M. Rola witamin w procesie erytropoezy. Standardy Medyczne Pediatria 2011;8:938-46.
  12. 12. Agostoni C, Buonocore G, Carnielli VP, et al. Enteral Nutrient Supply for Preterm Infants: Commentary From the European Society for Paediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition Committee on Nutrition. JPGN 2010;50:85-91.
  13. 13. Wang M. Iron deficiency and other types of anemia in infants and children. Am Fam Physician 2016;93(4):270-8.
  14. 14. Sazawal S, Dhingra U, Dhingra P, et al. Efficiency of red cell distribution width in identification of children aged 1-3 years with iron deficiency anemia against traditional hematological markers. BMC Pediatr. 2014;14:8.
  15. 15. Ullrich C, Wu A, Armsby C et al. Screening healthy infants for iron deficiency using reticulocyte hemoglobin content. JAMA 2005;294:924-30.
  16. 16. Ochocka M, Matysiak M. Niedokrwistości wieku dziecięcego. Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2000.
  17. 17. MacQueen BC, Christensen RD, Ward DM, et al. The iron status at birth of neonates with risk factors for developing iron deficiency: a pilot study. J Perinatol 2017;37(4):436-40.

Pierwszy artykuł:

Słowo wstępne