Spis treści

Wprowadzenie

Wścieklizna (rabies) jest ostrą chorobą zakaźną o dramatycznym przebiegu i niemal 100% śmiertelności, w której dochodzi do zajęcia ośrodkowego układu nerwowego (OUN). Choroba zaliczana jest do zoonoz, a jej czynnikiem etiologicznym jest neurotropowy wirus z rodziny Rhabdoviridae i rodzaju Lyssavirus. Materiał genetyczny wirusa stanowi jednoniciowy RNA o ujemnej polarności. 1 2 Nazwa choroby wywodzi się od charakterystycznego przebiegu jej najczęstszej postaci klinicznej.

Dzięki wprowadzeniu licznych programów zapobiegania wściekliźnie (szczepienia zwierząt domowych i lisów oraz profilaktyki przed- i poekspozycyjnej osób narażonych na zachorowanie) choroba ta rzadko występuje u ludzi na terenie Europy. Nadal jednak powinno się uwzględniać ją w diagnostyce różnicowej zapaleń mózgu o ostrym przebiegu i niewyjaśnionej etiologii u chorych z wywiadem pogryzienia przez zwierzęta czy podróży do krajów, gdzie występuje wścieklizna. Na podstawie różnic antygenowych w obrębie rodzaju Lyssavirus opisano 8 genotypów wirusa. Genotyp 1 obejmuje tzw. klasycznego wirusa wścieklizny, który jest najbardziej rozpowszechniony na świecie oraz szczepy laboratoryjne, służące do produkcji szczepionek. 1 0 3

Epidemiologia

Wścieklizna występuje u ssaków na całym świecie za wyjątkiem Antarktyki i niektórych wysp (Nowa Zelandia, Japonia, niektóre Wyspy Karaibskie). 4 5 Mimo ogromnego postępu w zakresie profilaktyki i kontroli wścieklizny liczba zgonów spowodowanych zakażeniem wirusem wścieklizny na świecie jest szacowana na około 26 000-60 000 rocznie. 6 Większość zachorowań występuje w krajach rozwijających się strefy tropikalnej i subtropikalnej ze względu na niedostateczną kontrolę wścieklizny u zwierząt udomowionych. Rozróżnia się dwie postacie epidemiczne wścieklizny – tzw. wściekliznę miejską oraz wściekliznę leśną (dziką). Wścieklizna może być przenoszona przez niemal każde zwierzę stałocieplne. W Europie częściej występuje wścieklizna leśna, a głównym rezerwuarem i przenosicielem wirusa jest lis rudy, rzadziej jenoty, łasice, kuny, borsuki i dziki, ale także zwierzęta hodowlane pokąsane przez dzikie zwierzęta. W Ameryce Północnej główną rolę w przenoszeniu choroby na ludzi odgrywają nietoperze, skunksy, lisy i szopy. W Afryce, Azji i Ameryce Południowej dominuje wścieklizna miejska, której rezerwuarem są psy, koty i małpy. Na świecie większość przypadków wścieklizny u ludzi (>90%) jest spowodowana ugryzieniami przez psy. Coraz większe znaczenie w przenoszeniu wścieklizny odgrywają nietoperze. 2 4 5 7

W Polsce w latach 1985-2000 nie stwierdzono zachorowań na wściekliznę wśród ludzi, natomiast 2 ostatnie zgony wystąpiły w 2000 i 2002 roku. Pierwszy przypadek dotyczył 59-letniej kobiety z północno-wschodniej Polski ugryzionej w palec przez własnego kota. W drugim przypadku ofiarą choroby był 28-letni mężczyzna z południowej Polski, u którego w wywiadzie brakowało informacji o pogryzieniu przez zwierzę. W żadnym z powyższych przypadków nie zastosowano profilaktyki wścieklizny. 8 9

Patogeneza

Do zakażenia wirusem wścieklizny dochodzi najczęściej w wyniku ugryzienia lub kontaktu uszkodzonej skóry ze śliną chorego zwierzęcia. Możliwe jest też zakażenie przez kontakt z nieuszkodzoną błoną śluzową. 4 7 Niezwykle groźne są ugryzienia przez nietoperze, które mogą zostać niezauważone ze względu na ich cienkie zęby, a do których może dochodzić w nocy podczas snu. 2 Dotychczas nie opisano transmisji wirusa z zakażonej osoby na personel medyczny. Ryzyko zakażenia istnieje podczas skórowania zwierząt. 10 Wyjątkowo do zakażenia może dojść po przeszczepieniu rogówki lub narządów litych pobranych od osób z nierozpoznaną wścieklizną. 11 0 13 Opisano także przypadki zachorowania w wyniku ekspozycji na aerozole zawierające duże stężenie wirusa wytwarzane w laboratorium lub występujące w jaskiniach zamieszkanych przez miliony nietoperzy. W tym przypadku do transmisji wirusa dochodzi najprawdopodobniej drogą przezspojówkową lub przez nici węchowe. 7 10 14

Okres inkubacji wścieklizny wynosi zazwyczaj 1-3 miesiące, w rzadkich przypadkach od kilku dni do ponad roku. Ugryzienia w okolicę głowy i szyi wiążą się z krótszym okresem wylęgania. Przedłużający się okres inkubacji może sprawiać trudności diagnostyczne, ponieważ pacjent może zapomnieć o pokąsaniu przez zwierzę. 7 15 Wirus wścieklizny wykazuje predylekcję do tkanki nerwowej i dociera do OUN drogą obwodowych włókien nerwowych. Po wszczepieniu wirusa zawartego w ślinie do tkanki mięśniowej w wyniku ukąszenia przez chore zwierzę dochodzi do jego połączenia z błoną komórkową komórki mięśniowej i wniknięcia do jej wnętrzna na drodze endocytozy. Po tym następuje wstępna miejscowa replikacja wirusa w komórkach mięśni poprzecznie prążkowanych. Następnie, po kilku lub kilkunastu godzinach, dochodzi do połączenia się wirusa z receptorem nikotynowym dla acetylocholiny na błonie postsynaptycznej płytki nerwowo-mięśniowej i wniknięcia do aksonu. W kolejnym etapie wirus wścieklizny wędruje do rdzenia kręgowego lub pnia mózgu drogą szybkiego wstecznego transportu aksonalnego z prędkością 50-100 mm/dobę. Nie stwierdzono, aby wirus przenosił się drogą krwionośną. Po dotarciu do rdzenia kręgowego wirus wnika i replikuje w zwojach korzeni grzbietowych oraz komórkach rogów przednich rdzenia kręgowego. 1 7 10 16 17 Po dotarciu do istoty szarej mózgu wirus ulega nasilonej replikacji, po czym rozprzestrzenia się po organizmie drogą eferentnych włókien nerwowych do gruczołów ślinowych, rogówki, nerwów brodawek włosowych, nadnerczy i innych narządów. Wirus replikuje w komórkach pęcherzykowych gruczołów ślinowych, skąd jest wydzielany w ślinie wściekłych zwierząt. Wirus wścieklizny zajmuje przede wszystkim neurony (nietypowe jest zajęcie komórek gleju), powodując ich znaczną dysfunkcję czynnościową, natomiast nie uszkadza bezpośrednio neuronów i zapobiega ich apoptozie. Dochodzi natomiast do indukcji apoptozy limfocytów T migrujących do zakażonych neuronów, przez co naciek zapalny jest nieznaczny i komórki układu odpornościowego nie mogą kontrolować zakażenia. Indukcja apoptozy u migrujących limfocytów T jest związana z nasiloną produkcją przez zainfekowane neurony białka FasL (Fas-ligand). Limfocyty T wykazują konstytutywnie ekspresję receptora Fas, który jest przezbłonową glikoproteiną i należy do rodziny receptorów czynnika martwicy nowotworu alfa (TNF-α). W warunkach fizjologicznych podstawowa ekspresja FasL przez neurony chroni je przed migrującymi do OUN cytotoksycznymi limfocytami T. Wiązanie Fas-FasL prowadzi do indukcji apoptozy limfocytów T, która jest szczególnie silnie wyrażona w zakażeniu wirusem wścieklizny. Dzięki powyższym zjawiskom wirus może długo replikować w organizmie gospodarza. 18 0 21 Obserwowane mikroskopowo zmiany neuropatologiczne w OUN powodowane przez wirusa wścieklizny są zaskakująco niewielkie w porównaniu z ciężkim obrazem klinicznym i śmiertelnością choroby oraz w porównaniu z zapaleniami mózgu o innej etiologii (np. opryszczkowym zapaleniem mózgu). 7 17 Naciek zapalny złożony z komórek jednojądrzastych dotyczy opon miękkich, okolic okołonaczyniowych i miąższu mózgu. W obrazie mikroskopowym obserwuje się usuwanie uszkodzonych neuronów przez makrofagi (neuronophagia). W klasycznej postaci wścieklizny zmiany zapalne są najbardziej widoczne w śródmózgowiu i rdzeniu kręgowym, natomiast w postaci porażennej w rdzeniu kręgowym. Zmianą histopatologiczną patognomoniczną dla wścieklizny są tzw. ciałka Negriego, które są kwasochłonnymi wtrętami w cytoplazmie neuronów mózgu zawierającymi elementy składowe wirionu, a czasem całe wiriony. Ciałka Negriego występują w niewielu zakażonych komórkach, zwykle są spotykane w komórkach Purkinjego w móżdżku i komórkach hipokampa. Brak ciałek Negriego nie wyklucza wścieklizny (rzadko są stwierdzane w laboratoryjnym wariancie wścieklizny). 2 3 5 7 22

Obraz kliniczny

Gdy pojawią się objawy kliniczne, choroba niemal zawsze nieuchronnie prowadzi do śmierci. W przebiegu wścieklizny można wyróżnić pięć kolejnych faz: okres inkubacji, prodromalny, faza ostrych objawów neurologicznych, śpiączka i śmierć. 10 W jednym z badań 98% chorych w momencie przyjęcia do szpitala rozwinęło już ostrą fazę neurologiczną. 15

Okres objawów prodromalnych

W okresie objawów prodromalnych wścieklizna jest bardzo rzadko podejrzewana. Okres ten rozpoczyna się w momencie wędrówki wirusa z tkanek obwodowych do rdzenia kręgowego i mózgu. Pojawienie się objawów klinicznych oznacza koniec okresu inkubacji i od tego momentu większość chorych umiera w ciągu 2 tygodni. Okres prodromalny obejmuje nieswoiste objawy kliniczne, takie jak gorączka, dreszcze, bóle mięśni, nudności, wymioty, osłabienie i gorsze ogólne samopoczucie. U około 1/3 chorych na wściekliznę związaną z pogryzieniem przez psy i u około 3/4 z chorobą związaną z ugryzieniem przez nietoperze pojawia się ból neuropatyczny w miejscu ukąszenia, opisywany jako drętwienie, palenie lub pieczenie oraz mrowienie lub swędzenie. Są to jedyne objawy fazy prodromalnej charakterystyczne dla wścieklizny, które w połączeniu z wywiadem w kierunku ukąszenia przez zwierzę powinny sugerować tę chorobę. Ból pojawiający się w miejscu wniknięcia wirusa stopniowo się nasila i rozprzestrzenia, by w końcu zająć całą kończynę. Czas trwania fazy prodromalnej zwykle nie przekracza tygodnia. 10 15

Faza ostrych objawów neurologicznych

Klasycznie wścieklizna przebiega pod postacią zapalenia mózgu (80%). Rzadziej spotyka się postać porażenną (20%). 7 W klasycznej wściekliźnie mózgowej (tzw. szalonej lub wściekłej) występuje skrajna nadpobudliwość nerwowa, zaburzenia czynności układu autonomicznego oraz wodowstręt (hydrophobia) i aerofobia. Hydrofobia jest patognomonicznym objawem wścieklizny i występuje u ponad 50% chorych. 5 Charakteryzuje się przytłaczającym strachem przed gwałtownymi szarpiącymi bolesnymi skurczami przepony i dodatkowych mięśni oddechowych, które są wywoływane aktem przełykania. Początkowo może objawiać się bólem gardła lub trudnościami w przełykaniu. Pobudzenie i skurcze mięśni wywołują także bodźce wzrokowe i akustyczne, takie jak widok lub odgłos cieknącego kranu, a nawet wspomnienie o wodzie lub powiew powietrza skierowany na chorego. Aerofobia występuje u około 10% chorych. Patologiczne skurcze przepony i innych mięśni oddechowych są związane z uszkodzeniem motoneuronów oddechowych położonych w okolicy jądra dwuznacznego. 2 5 Na początku choroby świadomość chorych jest zachowana, jednak może dochodzić do osłabienia koncentracji uwagi. Stopniowo pojawiają się zaburzenia świadomości. 10 Objawy ze strony układu autonomicznego są częste i obejmują nadmierne ślinienie się, łzawienie, wzmożoną potliwość, tzw. gęsią skórkę, rozszerzenie źrenic lub anizokorię. Uszkodzenie ciała migdałowatego może prowadzić do priapizmu i spontanicznych wytrysków. Gorączka, która pojawia się już w okresie prodromalnym, ma tendencję do utrzymywania się. Opisywano też przypadki wysokiej gorączki na przemian z okresami hipotermii. Często występuje tachykardia i zaburzenia rytmu serca, które mogą być związane z zajęciem splotu sercowego i zapaleniem mięśnia sercowego spowodowanym bezpośrednim działaniem wirusa. Tachykardia jest często dużo bardziej nasilona niż wynikałoby to z wysokości gorączki. Zaburzenia ze strony układu oddechowego obejmują tachypnoe, hipoksemię, depresję oddechową z okresami bezdechu oraz zachłystowe zapalenie płuc. 5 10 Często pojawiają się wzmożone odruchy ścięgniste i objaw Babińskiego. 23 U większości chorych obserwuje się pobudzenie psychoruchowe i agresję na przemian z okresami spokoju. 5 Między napadami pacjent jest spokojny, często świadomy swojej choroby, współpracuje z personelem medycznym. 2 Większość pacjentów umiera w ciągu 7 dni od pojawienia się objawów zapalenia mózgu. 10

Postać porażenna wścieklizny stanowi duże wyzwanie diagnostyczne i często jest błędnie rozpoznawana jako zespół Guillaina-Barrégo. 7 Przeszczepienia rogówki od dawców, u których wścieklizna została błędnie rozpoznana jako zespół Guillaina-Barrégo prowadziły do rozwoju wścieklizny u biorców. 11 W tej postaci dominują objawy stopniowo nasilającego się osłabienia i porażenie mięśni o charakterze wstępującym. Zaburzenia te często zaczynają się od miejsca ukąszenia. Pojawia się tetraplegia i porażenia mięśni twarzy. Niedowłady mogą rozprzestrzeniać się symetrycznie lub asymetrycznie. Obserwuje się fascykulacje oraz zniesienie odruchów ścięgnistych. Może występować sztywność karku. Czas przeżycia w postaci porażennej jest o kilka dni dłuższy niż w postaci klasycznej (do 10 dni). 5 7 10

Śpiączka i zgon

Do śpiączki dochodzi po 7-10 dniach od wystąpienia fazy ostrych objawów neurologicznych. Główną przyczyną zgonu w większości przypadków jest niewydolność krążenia. U 30-60% chorych 6-12 godzin przed śmiercią mogą pojawić się krwawe wymioty. 4 10

Objawy wścieklizny u zwierząt

Okres wylęgania wścieklizny u różnych gatunków zwierząt jest podobny i wynosi około 3-8 tygodni. U zwierząt wścieklizna może przebiegać pod postacią porażenną (tzw. cichą) lub agresji i pobudzenia psychoruchowego. Zwierzęta dotychczas spokojne i płochliwe podchodzą do ludzi (np. zające), chwytają pokarm z ręki, natomiast osobniki dotychczas ufne lub agresywne stają się ciche, lękliwe i nieporadne, chowają się w ciemne miejsca. Chore zwierzęta chwytają i połykają niejadalne przedmioty (np. kamienie), szczekają lub miauczą bez przyczyny, stają się agresywne w stosunku do innych zwierząt i ludzi (także właścicieli), mogą atakować nieożywione obiekty. Z powodu halucynacji wzrokowych i słuchowych zachowują się tak, jakby chwytały muchy. U kotów w przeciwieństwie do psów dużo częściej rozwija się agresywna postać wścieklizny. W stadium pobudzenia koty atakują z ogromną szybkością i dzikością, co stanowi ogromne zagrożenie dla ludzi. Poza tym obecny jest znaczny ślinotok oraz dochodzi do napadów szału podczas jedzenia i picia. Z czasem pojawiają się niedowłady i porażenia kończyn. Zwierzę umiera w ciągu 7 dni, co stanowi podstawę do 15-dniowej obserwacji zwierząt podejrzanych o wściekliznę, które zaatakowały ludzi. 2 22 24

Diagnostyka i rozpoznanie

W wywiadzie należy zwrócić uwagę, czy pacjent w ciągu ostatnich kilku tygodni nie był pogryziony przez ssaki, a szczególnie przez psy, koty i nietoperze. Ponadto ważne jest, czy chory nie podróżował do krajów endemicznego występowania wścieklizny. Istotna jest też informacja o spaniu pod gołym niebem, ponieważ m.in. w Stanach Zjednoczonych opisywano przypadki wścieklizny w wyniku niezauważonych ukąszeń przez nietoperze. Dodatni wywiad epidemiologiczny w połączeniu z objawami klinicznymi powinien sugerować wściekliznę. 17

W tomografii komputerowej (TK) głowy w stadium początkowym zwykle nie stwierdza się nieprawidłowości. W późniejszym okresie mogą być widoczne cechy obrzęku mózgu. Obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego (MR) może ujawnić umiarkowane podwyższenie intensywności sygnału w obrazach T2 zależnych w obrębie hipokampa, podwzgórza, pnia mózgu oraz w głębokiej i podkorowej istocie białej, a także w istocie szarej. Wzmocnienie kontrastowe widoczne jest w późniejszych stadiach choroby. Zmiany w zapisie elektroencefalograficznym (EEG) są niecharakterystyczne. 10 25

Wyniki rutynowych badań laboratoryjnych są nieswoiste. W morfologii krwi obwodowej można stwierdzić leukocytozę z neutrofilią (średnio 15 000 komórek/µl). W płynie mózgowo-rdzeniowym (PMR) obserwuje się pleocytozę limfocytarną (średnio 61 komórek/µl), wzrost stężenia białka (średnio 72,8 mg/dl) oraz prawidłowe stężenie glukozy. 17 26 Obraz PMR może jednak być prawidłowy. W większości przypadków obserwuje się hiponatremię, która jest związana ze zmniejszonym przyjmowaniem płynów lub z zespołem nieadekwatnego wydzielania wazopresyny (SIADH). Rzadko występuje hipernatremia. 10

Kliniczne podejrzenie wścieklizny powinno być potwierdzone w badaniach dodatkowych. Podczas gdy w krajach rozwijających się rozpoznanie wścieklizny zazwyczaj jest proste, kiedy chory zgłasza ukąszenie przez wściekłe zwierzę, to jej rozpoznanie rzadko jest brane pod uwagę w krajach rozwiniętych. Wściekliznę należy podejrzewać u chorych z objawami ostrego zapalenia mózgu oraz z porażeniem wstępującym o niewyjaśnionej etiologii. Z materiałów biologicznych w diagnostyce wścieklizny wykorzystuje się surowicę, PMR, świeżą ślinę, rogówkę, bioptaty skóry pobrane z karku (wirus obecny jest w nerwach skórnych brodawki włosa, a uzyskane próbki powinny zawierać co najmniej 10 brodawek) oraz tkankę mózgu (jednak przyżyciowo biopsję mózgu wykonuje się rzadko, ponieważ niesie ze sobą ryzyko powikłań). W celu wykluczenia z dużym prawdopodobieństwem zachorowania należy zastosować kilka technik diagnostycznych.

Przyżyciowe rozpoznanie wścieklizny może być postawione wysoce czułymi i swoistymi (czułość i swoistość zbliżone do 100%) metodami immunofluorescencji bezpośredniej (direct fluorescent antibody, DFA) wykrywającymi antygen wirusa i uważanymi za złoty standard diagnostyczny. 5 27 Najczulszy jest test wykrywania antygenu wirusa w bioptatach skóry karku (czułość 50-94%, wzrasta z czasem trwania choroby). 27

Ujemne wyniki badań nie wykluczają zakażenia wirusem wścieklizny i powinny zostać powtórzone.

Stwierdzenie obecności swoistych przeciwciał w surowicy lub PMR przeciwko wirusowi wścieklizny pozwala na rozpoznanie choroby u uprzednio nieszczepionych chorych. Swoiste przeciwciała neutralizujące pojawiają się w surowicy krwi po około 7 dniach od wystąpienia objawów klinicznych, a w PMR nieco później. W praktyce klinicznej jest to zbyt późno. Do badań na obecność przeciwciał wymagane jest pobranie co najmniej 0,5 ml surowicy lub PMR. Jeśli pacjent był wcześniej szczepiony, kilka dni później należy pobrać kolejną próbkę w celu stwierdzenia, czy miano przeciwciał wzrosło. Badaniem o bardzo wysokiej czułości i swoistości jest metoda reakcji łańcuchowej polimerazy z odwrotną transkryptazą (RT-PCR). Czułość i swoistość RT-PCR jest zbliżona do 100% w przypadku badania próbek pobranych ze skóry, a w przypadku analizy próbek śliny czułość i swoistość wynoszą odpowiednio około 60 i 70% (czułość wzrasta do 100% w przypadku analizy co najmniej 3 próbek śliny). Odcisk rogówki i ślina chorego są najbardziej dostępnymi materiałami do badania tą metodą. 5 7 23 WHO zaleca, aby każdy przypadek klinicznego podejrzenia wścieklizny był potwierdzony spełnieniem przynajmniej jednego z następujących kryteriów laboratoryjnych:

  • wykrycie antygenów wirusa (metodą DFA),
  • izolacja wirusa w hodowli komórkowej lub przy użyciu zwierząt laboratoryjnych,
  • obecność swoistych przeciwciał przeciwwirusowych w PMR i surowicy u osób wcześniej nieszczepionych,
  • stwierdzenie obecności RNA wirusa w materiale pobranym przyżyciowo lub pośmiertnie (np. w bioptacie mózgu, skórze lub ślinie) metodą RT-PCR. 6

Diagnostyka pośmiertna obejmuje te same badania, które stosowane są w diagnostyce przyżyciowej, poza oznaczaniem przeciwciał. Głównym materiałem stosowanym do badań pośmiertnych jest tkanka mózgu badana metodą DFA na obecność antygenów wirusa wścieklizny. Poza tym przeprowadza się bezpośrednie badanie mikroskopowe tkanek mózgu. 3 5

Profilaktyka

Ponieważ wścieklizna jest chorobą nieuleczalną, wszelkie działania powinny skupić się przede wszystkim na jej zapobieganiu. Środki zapobiegawcze są skierowane na zwierzęta, które mogą przenosić wściekliznę oraz obejmują profilaktykę przed- i poekspozycyjną osób narażonych na zakażenie wirusem wścieklizny. 4

W przypadku ugryzienia przez wściekłe lub nieznane zwierzę ranę należy kilkakrotnie przemyć wodą z mydłem (przez kilka minut), a następnie przepłukać czystą wodą. 2 22 Następnie należy miejscowo zastosować środki o działaniu wirusobójczym (np. jodopowidon lub alkohol w stężeniu 40-70%). Obecnie nie zaleca się stosowania preparatów dezynfekcyjnych na bazie czwartorzędowych związków amoniowych (np. benzalkonium), ponieważ są inaktywowane przez mydło. 22 Miejscowe opracowanie rany może zmniejszyć ryzyko zakażenia wirusem nawet o 90%. Tkanki martwe powinny zostać opracowane chirurgicznie, jednak jeśli nie jest to konieczne, należy unikać zakładania szwów lub zastosować odroczone zszycie rany, nie zaleca się również opatrunków okluzyjnych. Należy rozważyć profilaktykę przeciwtężcową oraz zapobiegawczo antybiotyki, jeśli istnieją wskazania. 7 22

Szczepionka przeciw wściekliźnie została zastosowana po raz pierwszy w 1885 r. przez Ludwika Pasteura. 28 Zarejestrowana w Polsce szczepionka zawiera zabitego wirusa wścieklizny, pochodzącego z hodowli komórkowych. 29 Jest wysoce immunogenna i bezpieczna. 2 W przypadku szczepień poekspozycyjnych nie ma przeciwwskazań do podania szczepionki, ponieważ jest to jedyna metoda pozwalająca zapobiec śmierci u osób zakażonych wirusem wścieklizny. 30

Profilaktyka przedekspozycyjna

Profilaktykę przedekspozycyjną zaleca się u osób narażonych na kontakt ze wściekłymi zwierzętami (weterynarze, leśnicy, myśliwi, treserzy zwierząt, pracownicy rzeźni i laboratoriów, grotołazi). U osób podróżujących do krajów endemicznego występowania wścieklizny, gdzie dostęp do opieki zdrowotnej jest utrudniony, również należy rozważyć szczepienie przed wyjazdem. 4 U osób narażonych na zakażenie wirusem wścieklizny szczepienie podstawowe obejmuje 3 dawki szczepionki podawanej w dniach: 0, 7 i 28. Dawkę uzupełniającą podaje się po roku, a dawki przypominające co 5 lat. Szczepionkę podaje się domięśniowo – u dorosłych w mięsień naramienny, u dzieci w przednio-boczną część uda. 29 Nie należy szczepić w pośladek ze względu na ryzyko niepowodzenia szczepienia. 7 Szczepienia profilaktyczne mogą być wykonywane w podstawowej opiece zdrowotnej. 30

Profilaktyka poekspozycyjna

Rycina. Algorytm profilaktyki poekspozycyjnej wścieklizny.

Rycina. Algorytm profilaktyki poekspozycyjnej wścieklizny.

Rycina przedstawia schemat profilaktyki poekspozycyjnej. Zwierzęta podejrzane o wściekliznę powinny zostać poddane 15-dniowej obserwacji. U osób z potwierdzoną ekspozycją lub w przypadku jej podejrzenia (postępowanie zależy od rodzaju rany i stanu zwierzęcia) stosuje się szczepienie podstawowe polegające na zastosowaniu pojedynczych dawek szczepionki jak najszybciej po narażeniu w schemacie:  0, 3, 7, 14 i 28 dni. W przypadku ciężkich ran (kategoria III wg WHO) lub w przypadku pacjentów w stanie immunosupresji (np. z AIDS, biorcy przeszczepów) z kategorią II narażenia razem z pierwszą dawką szczepionki należy zastosować immunoglobulinę (Ig) przeciwko wściekliźnie: ludzką (20 j.m./kg mc.) lub końską (40 j.m./kg mc.). Jeśli wcześniej uodporniona osoba ulegnie narażeniu na wściekliznę należy podać 2 dawki przypominające w schemacie: 0 i 3 dni. Osobom wcześniej zaszczepionym nie zaleca się podawania Ig. Immunoglobulinę można podać do 7 dnia od podania pierwszej dawki szczepionki. Późniejsze zastosowanie Ig nie przynosi korzyści i naraża pacjenta na działania niepożądane związane z jej zastosowaniem. 7 30 31 Szczepionkę i immunoglobulinę należy podać w oddalone od siebie miejsca ciała po przeciwnych stronach, nigdy w tym samym miejscu ani tą samą strzykawką. Preparaty ludzkiej Ig są dużo lepiej tolerowane niż końskiej. W czasie stosowania profilaktyki, o ile nie jest to bezwzględnie konieczne, nie należy stosować glikokortykosteroidów i innych leków immunosupresyjnych, ponieważ mogą hamować rozwój czynnego uodpornienia. 6 7 29 Kwalifikacja do szczepień oraz szczepienia poekspozycyjne prowadzone są w specjalistycznych poradniach chorób zakaźnych. 30 Prawidłowo i wcześnie przeprowadzone postępowanie poekspozycyjne, łącznie z prawidłowym oczyszczeniem rany, pozwala zapobiec chorobie prawie w 100%. 30

Leczenie i rokowanie

Niestety nie istnieje skuteczne leczenie przyczynowe wścieklizny, stosuje się głównie leczenie objawowe. Dotychczas w piśmiennictwie opisano jedynie 7 przypadków przeżycia wścieklizny. W pięciu z nich chorzy przed wystąpieniem objawów klinicznych otrzymali szczepionkę, jednak nikt nie otrzymał antytoksyny. 17 W 2005 r. opisano szósty przypadek wyzdrowienia, mimo że pacjent nie był zaszczepiony. Była to 15-letnia dziewczynka, u której objawy wścieklizny wystąpiły miesiąc po pokąsaniu przez nietoperza. W leczeniu zastosowano eksperymentalną metodę (tzw. protokół Milwaukee stworzony przez dr. Rodneya Willoughby Jr) obejmującą śpiączkę farmakologiczną i leki przeciwwirusowe. 32 W 2012 roku opisano kolejny przypadek pacjenta, który przeżył wściekliznę i był leczony według protokołu Milwaukee. Przy wypisie ze szpitala jedynym pozostałym deficytem neurologicznym było nieznaczne opadanie stopy. 33 Niestety kilka innych prób leczenia zgodnie z powyższym protokołem nie powiodło się.

Leczenie eksperymentalne według protokołu Milwaukee zastosowane po raz pierwszy obejmowało podanie ketaminy w dawce 2 mg/kg/h i midazolamu w dawce 1-3,5 mg/kg/h (oba leki stosuje się w celu zmniejszenia aktywności mózgu widocznej w badaniu EEG). Ponadto stosowane były duże dawki rybawiryny (od trzeciego dnia hospitalizacji), początkowo w dawce nasycającej 33 mg/kg, następnie 16 mg/kg co 6 godzin oraz amantadyna w dawce 200 mg/dobę przez tydzień (od czwartego dnia hospitalizacji). 32 Większość ekspertów nie zaleca rutynowego leczenia według protokołu Milwaukee. Leczenie eksperymentalne na oddziale intensywnej terapii można rozważyć po szczegółowym rozważeniu, czy korzyści z jego zastosowania nie będą większe niż potencjalne ryzyko oraz po uzyskaniu świadomej zgody pacjenta (jeśli nie pojawiły się u niego jeszcze zaburzenia świadomości), jego rodziny lub opiekunów prawnych, zwłaszcza gdy chory jest młody, dotychczas był zdrowy, przed wystąpieniem objawów klinicznych otrzymał szczepionkę, a choroba jest we wczesnym stadium zaawansowania klinicznego. Istnieje szansa, że zastosowane leczenie uratuje choremu życie. 34 35

W leczeniu objawowym stosuje się leki uspokajające i przeciwbólowe. Opieka w warunkach oddziału intensywnej terapii może przedłużyć życie choremu o kilka tygodni. 17 22

Podsumowanie

Wścieklizna w Polsce i innych krajach rozwiniętych jest chorobą bardzo rzadką, jednak należy o niej pamiętać w diagnostyce różnicowej u pacjentów z objawami zapalenia mózgu lub izolowanymi objawami porażennymi, ponieważ nadal istnieje ryzyko jej wystąpienia po pogryzieniu lub kontakcie ze śliną zakażonych zwierząt. Ponadto nasilony ruch turystyczny zwiększa ryzyko ekspozycji na wirusa przez osoby podróżujące do krajów jej występowania. Spośród wszystkich znanych chorób zakaźnych wścieklizna, obok chorób prionowych, ma najwyższy współczynnik śmiertelności. Jedyną skuteczną metodą zapobiegania chorobie zarówno przed ekspozycją, jak i po niej stanowią szczepienia.

Piśmiennictwo
  1. 1. Schnell MJ, McGettigan JP, Wirblich C, Papaneri A. The cell biology of rabies virus: using stealth to reach the brain. Nature Rev Microbiol 2010; 8: 51-61.
  2. 2. Cianciara J, Juszczyk J. Choroby zakaźne i pasożytnicze. Wydawnictwo Czelej, Lublin 2012.
  3. 3. Plotkin SA. Rabies. Clin Infect Dis 2000; 30: 4-12.
  4. 4. Hankins DG, Rosekrans JA. Overview, prevention, and treatment of rabies. Mayo Clin Proc 2004; 79: 671-676.
  5. 5. Rupprecht CE. Clinical manifestations and diagnosis of rabies. UpToDate. http://www.uptodate.com/contents/clinical-manifestations-and-diagnosis-of-rabies.
  6. 6. WHO Expert Consultation on rabies. Second report. World Health Organ Tech Rep Ser 2013; 982: 1-139.
  7. 7. Kasper DL, Fauci AS. Harrison. Choroby zakaźne. Wydawnictwo Czelej, Lublin 2012.
  8. 8. Sadkowska-Todys M, Kucharczyk B. Wścieklizna w Polsce w 2010 roku. Przegl epidemiol 2012; 66: 297-302.
  9. 9. Sadkowska-Todys M, Rosinska M, Smreczak M, et al. Rabies surveillance, trends in animal rabies and human post-exposure treatment in Poland, 1990-2004. Euro Surveill 2005; 10: 226-8.
  10. 10. Hemachudha T, Laothamatas J, Rupprecht CE. Human rabies: a disease of complex neuropathogenetic mechanisms and diagnostic challenges. Lancet Neurol 2002; 1: 101-109.
  11. 11. Houff SA, Burton RC, Wilson RW, et al. Human-to-human transmission of rabies virus by corneal transplant. N Engl J Med 1979; 300: 603-604.
  12. 12. Gode GR, Bhide NK. Two rabies deaths after corneal grafts from one donor. Lancet 1988; 2: 791.
  13. 13. Srinivasan A, Burton EC, Kuehnert MJ, et al. Transmission of rabies virus from an organ donor to four transplant recipients. N Engl J Med 2005; 352: 1103-111.
  14. 14. Winkler WG, Fashinell TR, Leffingwell L, et al. Airborne rabies transmission in a laboratory worker. JAMA 1973; 226: 1219-1221.
  15. 15. Susilawathi NM, Darwinata AE, Dwija IB, et al. Epidemiological and clinical features of human rabies cases in Bali 2008-2010. BMC Infect Dis 2012; 12: 81.
  16. 16. Lentz TL, Burrage TG, Smith AL, et al. Is the acetylcholine receptor a rabies virus receptor? Science 1982; 215: 182-184.
  17. 17. Warrell MJ, Warrell DA. Rabies and other lyssavirus diseases. Lancet 2004; 363: 959-69.
  18. 18. Baloul L, Lafon M. Apoptosis and rabies virus neuroinvasion. Biochimie 2003; 85: 777-788.
  19. 19. Baloul L, Camelo S, Lafon M. Up-regulation of Fas ligand (FasL) in the central nervous system: a mechanism of immune evasion by rabies virus. J Neurovirol 2004; 10: 372-382.
  20. 20. Suja MS, Mahadevan A, Madhusudana SN, Shankar SK. Role of apoptosis in rabies viral encephalitis: a comparative study in mice, canine, and human brain with a reviewof literature. Patholog Res Int 2011; 2011: 374286.
  21. 21. Clarke P, Tyler KL. Apoptosis in animal models of virus-induced disease. Nature Rev Microbiol 2009; 7: 144-155.
  22. 22. Warrell DA, Cox TM, Firth JD, Benz EJ Jr. Oxford Textbook of Medicine 4th edition. Oxford University Press 2003.
  23. 23. Marx J, Hockberger R, Walls R. Rosen’s emergency medicine - concepts and clinical practice. 18th edition. Saunders 2013.
  24. 24. Barszcz K, Kupczyńska M, Kobryń H. Wpływ wybranych biologicznych czynników chorobotwórczych na niektóre struktury ośrodkowego układu nerwowego i zachowanie się zwierząt. Kosmos 2010; 59: 71-81.
  25. 25. Burton EC, Burns DK, Opatowsky MJ, et al. Rabies encephalomyelitis: clinical, neuroradiological, and pathological findings in 4 transplant recipients. Arch Neurol 2005; 62: 873-882.
  26. 26. Petersen BW, Rupprecht CE. Human rabies epidemiology and diagnosis. http://www.intechopen.com/books/non-flavivirus-encephalitis/human-rabies-epidemiology-and-diagnosis.
  27. 28. Pasteur L. Methode pour prevenir la rage apres morsure. Compte Rendue Academie Science 1885; 101: 765-773.
  28. 29. Indeks leków MP. Verorab. http://indeks.mp.pl/leki/desc.php?id=4842.
  29. 30. Mrożek-Budzyn D. Wakcynologia praktyczna. Alfa Medica Press, Bielsko-Biała 2012.
  30. 31. Program szczepień ochronnych na 2014 rok. Cz. III - Profilaktyka czynno-bierna wścieklizny. http://www.mp.pl/szczepienia/programszczepien/polska/show.html?id=71879.
  31. 33. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Recovery of a patient from clinical rabies--California, 2011. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2012; 61: 61-65.
  32. 34. Rupprecht CE. Treatment of rabies. UpToDate. http://www.uptodate.com/contents/treatment-ofrabies?source=search_result&search=rabies&selectedTitle=1~62
  33. 35. Jackson AC, Warrell MJ, Rupprecht CE, et al. Management of rabies in humans. Clin Infect Dis 2003; 36: 60-3.

Następny artykuł:

Wstęp