Spis treści
Obecność ubytku tkanek, konsystencja lub twardość oraz kolor zębiny i szkliwa są uważane za najlepsze kliniczne parametry do oceny aktywności i rozległości zarówno próchnicy pierwotnej, jak i wtórnej
Próchnica wtórna nie została dotychczas jednoznacznie zdefiniowana klinicznie i histopatologicznie. Nie ma też zgodności w literaturze odnośnie do jej patogenezy, a jej wykrycie stanowi ciągle ogromny problem dla lekarzy klinicystów, powodując często niepotrzebne usuwanie wypełnień i leczenie
określane w piśmiennictwie jako over treatment, szczególnie wtedy, gdy diagnoza opiera się jedynie na podstawie obecności nieprawidłowości brzegu wypełnienia lub przebarwień. Badania epidemiologiczne prowadzone od wielu lat dowodzą, że diagnoza kliniczna próchnicy wtórnej bywa najczęstszą przyczyną wymiany wypełnień w ogólnej praktyce stomatologicznej. 1, 2, 3 Ponad połowa wszystkich zabiegów stomatologicznych przeprowadzanych u pacjentów polega na wymianie bezpośrednio lub pośrednio wykonanych uzupełnień, nie wyłączając np. wypełnień szkło-jonomerowych czy uzupełnień typu inlay/onlay oraz koron protetycznych (ryc. 1). 4, 5

Ryc. 1. Pacjent z niedostateczną higieną jamy ustnej.
Co mówią badania
Badania naukowe dowodzą, że w etiologii próchnicy wtórnej odgrywają rolę podobne czynniki jak w przypadku próchnicy pierwotnej. 7, 8 Częste spożycie węglowodanów oraz niedostateczna higiena jamy ustnej powodują powstanie zmiany próchnicowej pod pokrywającym powierzchnię zęba biofilmem bakteryjnym (ryc. 2).
Ryc. 2. Pacjent z niedostateczną higieną jamy ustnej oraz aktywną próchnicą wtórną wokół widocznych wypełnień. Konieczne leczenie.
Rolę drobnoustrojów próchnicotwórczych potwierdzają badania E. Kidd i wsp., które wykazały, że flora bakteryjna wyizolowana z ubytków próchnicowych nie różni się od tej wykrywanej w próchnicy występującej wokół wypełnień. 7, 10 Gonzales-Cabezas w badaniach z zastosowaniem mikroskopu konfokalnego oraz technik immunofluorescencji stwierdził obecność Streptococcus mutans, Actinomyces naeslundii i Lactobacillus w zaawansowanych przypadkach próchnicy wokół wypełnień amalgamatowych. Mejare i wsp. 12 wykryli obecność Actinomyces spp. i Streptococcus pod wypełnieniami kompozytowymi, co potwierdza rolę tych drobnoustrojów w rozwoju próchnicy wtórnej. Obserwacje naukowe wykazują ponadto, że bakterie próchnicotwórcze zdolne są do przeżycia pod wypełnieniami nawet do kilku miesięcy. 11
Dalsze badania mikrobiologiczne połączeń szkliwno-zębinowych związanych z ubytkiem wypełnionym amalgamatem, przeprowadzone przez Kidd i wsp. 13 wykazały obecność większej liczby bakterii Streptococcus mutans i Lactobacillus spp. w ubytkach z aktywną próchnicą wtórną niż w ubytkach z próchnicą nieaktywną lub zatrzymaną. Zauważono również, że szerokie rowki lub szczeliny przy wypełnieniach (> 0,4 mm) zawierają więcej bakterii Streptococcus mutans, Lactobacillus niż obrzeża z węższymi szczelinami. W konkluzji autorów znalazła się sugestia, że szerokie szczeliny w sąsiedztwie wypełnienia wskazują na konieczność jego wymiany. Natomiast węższe szczeliny nie powinny być uważane za powód do wymiany uzupełnień. Ponadto sugerowano, że obserwowane zmiany koloru w samym szkliwie nie zawsze mogą odzwierciedlać stopień infekcji zębiny, aktywność procesu próchnicowego przy wypełnieniach, więc nie powinny skutkować wymianą wypełnienia. 14
Ciekawe badania przeprowadził Svanberg i wsp., 15 wykazując, że próbki płytki pobranej z obrzeża wypełnienia amalgamatowego, kompozytowego oraz szkło-jonomerowego różnią się pod względem składu bakterii. Zaobserwowali również, że niska liczba Streptococcus mutans w ślinie nie wyklucza wysokiego stężenia tych mikroorganizmów w biofilmie na krawędzi poszczególnych wypełnień. 16 Zjawisko to jest przedmiotem dalszych badań nad występowaniem biofilmu na wypełnieniach różnego typu.
W cytowanych badaniach klinicznych i mikrobiologicznych dotyczących styku zęba z wypełnieniem próbki bakteriologiczne były pobierane z obrzeża wypełnienia oraz z połączenia szkliwno-zębinowego po tym, jak wypełnienie zostało usunięte. Badane obrzeża były klasyfikowane na przebarwione lub wolne od przebarwień, a także na szczelne oraz mające wąskie lub szersze bruzdy. Grupę kontrolną stanowiły próbki z miejsc z aktywną próchnicą wtórną. Uzyskane wyniki stanowią ważną dla lekarzy praktyków informację. Żadne z klinicznych kryteriów uwzględnionych w badaniach nie pozwalało przewidzieć obecności aktywnej próchnicy wtórnej pod wypełnieniem. Tylko rzeczywista próchnica – otwarty ubytek z odsłoniętą zębiną – na krawędzi wypełnienia została uznana za realny wskaźnik wtórnej próchnicy wymagającej usunięcia wypełnienia lub jego naprawy (ryc. 3). 14, 15
Ryc. 3. Niewielkie przebarwienie obrzeża wypełnienia w zębie 16. Nie wymaga leczenia.
Jak zdefiniować próchnicę wtórną?
Definicja próchnicy wtórnej (caries secundaria, secondary caries, recurrent caries) mimo znacznej częstości jej występowania nie jest dobrze sprecyzowana. Próchnica wtórna manifestuje się klinicznie jako plama próchnicowa, przebarwienie tkanek wokół wypełnienia, przebarwienie brzegów wypełnienia, szczelina brzeżna, ubytek z odsłoniętą zębiną próchnicową oraz w skrajnych przypadkach jako utrata części lub całego wypełnienia. Najczęściej określa się ją jako próchnicę w postaci ostrej lub przewlekłej przy brzegach istniejących wypełnień. Rozróżniamy również próchnicę wtórną aktywną i zatrzymaną. 17
Pierwsze badanie histopatologiczne próchnicy wtórnej zostało przeprowadzone in vivo na zębie z wypełnieniem amalgamatowym. Badanie mikroskopem polaryzacyjnym uwidoczniło, że zmiana próchnicowa wokół wypełnienia jest „dwupiętrowa” i składa się z dwóch łączących się na granicy wypełnienia obszarów: próchnicy wtórnej zewnętrznej (ang. outer lesion) i próchnicy wtórnej wewnętrznej, przyściennej (ang. wall lesion). 18, 19
-
Próchnica wtórna zewnętrzna powstaje w szkliwie sąsiadującym z wypełnieniem, podobnie jak próchnica pierwotna, głównie w wyniku retencji biofilmu bakteryjnego wokół wypełnienia i działania próchnicotwórczych drobnoustrojów. Próchnica wtórna zewnętrzna jest próchnicą pierwotną występującą przy wypełnieniu i ma cechy próchnicy pierwotnej, tj. pierwsza kliniczna oznaka może przybrać postać białej plamki zaburzającej przezierność szkliwa. Matowy biały kolor wczesnej próchnicy wtórnej dobrze kontrastuje z połyskliwym nienaruszonym szkliwem, może jednak być zmieniony przez kolor lub składowe istniejącego materiału wypełniającego, np. przez składowe lub produkty rozpadu wypełnienia amalgamatowego. Wczesna próchnica wtórna zewnętrzna będzie się rozwijać zgodnie z charakterystycznymi stopniami histologicznymi. Stopnie są rozpoznawane w oparciu o rozmiar porów pojawiających się w szkliwie w wyniku demineralizacji. W miarę jak ubytek się powiększa, warstwy powierzchniowe załamują się i pojawia się ubytek przylegający do wypełnienia ryc. 4. 6
Ryc. 4. Wypełnienie na powierzchni żującej zęba 26. Ze względu na aktywną próchnicę widoczną na powierzchni mezjalnej konieczne jest całkowite lub częściowe usunięcie wypełnienia.
- Koncepcje dotyczące patomechanizmu próchnicy wtórnej wewnętrznej są różne. Problem ten nie jest do końca wyjaśniony. Według jednych autorów zasadniczą rolę odgrywa w jej powstaniu mikroprzeciek bakteryjny. 19, 20 Zmiana wewnętrzna rozwija się wzdłuż ścian ubytku z powodu obecności szczeliny między wypełnieniem i tkankami zęba. Autorzy badań podkreślają jednak, że sam mikroprzeciek bez biofilmu bakteryjnego nie przyczyni się do powstania próchnicy wtórnej. 10, 21 W innej koncepcji uważa się, że powstanie próchnicy wewnętrznej nie zależy od obecności mikroprzecieku, 1 jest kontynuacją próchnicy wtórnej zewnętrznej, gdzie proces przebiega zgodnie z układem pryzmatów szkliwa. Badania udowodniły ponadto, że próchnica wtórna wewnętrzna nie rozwija się in vivo bez obecności próchnicy wtórnej zewnętrznej.
Czynnikami predysponującymi wypełnienie do próchnicy wtórnej są:
- technika wykonania,
- właściwości materiału,
- higiena jamy ustnej.
Wszelkie zasady opracowywania ubytków próchnicowych i wskazania producentów dotyczące materiałów do wypełnień powinny być bezwzględnie przestrzegane. Niezwykle ważna jest strefa przydziąsłowa wypełnienia. Kontrola wilgoci, z uwzględnieniem stosowania koferdamu, jest zdecydowanie trudniejsza przy brzegu dodziąsłowym w ubytkach klasy II, III, IV i V w porównaniu z innymi miejscami, zwłaszcza gdy brzeg dodziąsłowy zlokalizowany jest poddziąsłowo. Kontrola ściany dodziąsłowej bywa czasem trudna i dlatego ważne jest właściwe użycie formówki. Dociśnięcie formówki klinem w przestrzeni międzyzębowej pozwala uniknąć nawisów sprzyjających gromadzeniu płytki i rozwojowi próchnicy wtórnej. Niedostateczne opracowanie miejsca styku materiału z tkankami zęba, puste przestrzenie oraz porowatość pogarszają jakość wypełnienia. 10, 21 Efekt końcowy zależny jest także od właściwości materiału wypełniającego.
Po założeniu wypełnienia z każdego typu materiału istnieje możliwość powstania mikroszczeliny między twardymi tkankami zęba a materiałem. Stawiamy sobie pytanie, czy w warunkach klinicznych wszystkie szczeliny wykryte w czasie badania za pomocą zgłębnika należy leczyć poprzez wymianę całego wypełnienia lub naprawę określonej części wypełnienia. Wąskie przestrzenie, szczeliny, rowki oraz „mikroprzecieki” nie prowadzą do powstania próchnicy wtórnej, jednak duże przestrzenie mogą ją powodować. Wiele badań wykazało, że nie ma korelacji pomiędzy rozmiarem szczeliny a rozwojem czy obecnością próchnicy wtórnej, z wyjątkiem przypadków dużych szczelin o wielkości 250 μm lub 400 μm. 10, 21
Próchnica wtórna a materiały do wypełnień
Szczególne trudności stwarza próchnica wtórna związana z wypełnieniami amalgamatowymi. Amalgamaty charakteryzują się brakiem przylegania do tkanek zęba. Brak szczelności brzeżnej jest wskazaniem do wymiany wypełnienia (ryc. 5).
Ryc. 5. Stare wypełnienie amalgamatowe w zębie 26. Widoczny brak szczelności brzeżnej. Wymaga polerowania i obserwacji.
Ryc. 6. Przebarwione wypełnienie w zębie 21. Wymaga polerowania lub wymiany ze względów estetycznych.
Materiały na bazie żywic mają nieodłączny problem skurczu polimeryzacyjnego. W wyniku skurczu polimeryzacyjnego dochodzi do odrywania materiału od ścian ubytku i powstawania przestrzeni. Uniknąć szczeliny brzeżnej i mikroprzecieku jest bardzo trudno. Nowe systemy wiążące i techniki (kanapkowa) z zastosowaniem cementów szkło-jonomerowych nie niwelują tego problemu. Na chwilę obecną szczelność zakładanego wypełnienia może poprawić warstwowa kondensacja materiałów złożonych i stosowanie płynnych ich postaci. Ponadto w celu zapobiegania powstawaniu szczeliny w części dziąsłowej wypełnienia powinno się stosować przezroczyste paski i kliny, które pozwolą na przenikanie światła do powierzchni dziąsłowej ubytku. 21, 22 Należy jeszcze dodać, że brak rozwoju próchnicy wtórnej, poza utworzeniem bliskiego styku powierzchni ubytku i wypełnienia z minimalną mikroszczeliną, jest uwarunkowany również doszczętnością usunięcia zmienionych próchnicowo tkanek.
Materiały uwalniające fluor mocno przyciągnęły uwagę w trakcie ostatnich 20-30 lat. Liczne badania wykazały, że fluor uwalnia się z materiałów szkło-jonomerowych i amalgamatów zawierających fluor i kompozytów w warunkach in vitro i in vivo. 23 W badaniach in vitro wykazano również, że fluor można było znaleźć w ścianach ubytku, które miały styczność z cementem szkło-jonomerowym i amalgamatem zawierających fluor, ale wyniki te są kwestionowane. 24 Ponadto stężenie fluoru wymagane do zapobiegania próchnicy wtórnej nie zostało ustalone i może się różnić w zależności od wielu czynników. Tak więc obecność fluorku w wypełnieniu nie musi koniecznie prowadzić do redukcji próchnicy. W rzeczywistości badania nad przyczynami wymiany uzupełnień w ogólnej praktyce wskazują na ograniczenie lub brak dodatkowego przeciwpróchnicowego wpływu fluoru uwalnianego z materiałów szkło-jonomerowych, choć kontrolowane badania kliniczne z trzy-pięcioletnim okresem obserwacji wskazują na niską częstość próchnicy wtórnej i redukcję próchnicy zębów przylegających do uzupełnień szkło-jonomerowych. Istnieją badania, które wykazały, że fluor uwalniający się z cementów szkło-jonomerowych może zapobiec wtórnej próchnicy w warunkach in vitro, ale nie wykazuje takiego działania in vivo. 25
Podsumowanie
Próchnica wtórna jest trudna w diagnostyce klinicznej. 21 Obecność ubytku tkanek, konsystencja lub twardość oraz kolor zębiny i szkliwa są uważane za najlepsze kliniczne paramenty do oceny aktywności i rozległości zarówno próchnicy pierwotnej, jak i wtórnej. Najpewniejszym kryterium pozwalającym na zdiagnozowanie próchnicy wtórnej jest obecność ubytku z odsłoniętą zębiną. Najczęściej próchnica wtórna występuje na powierzchniach stycznych, ponieważ płytka bakteryjna jest trudna do usunięcia. 21 Wszystkie wypełnienia są nieszczelne i nie chronią skutecznie przed próchnicą wtórną. Dlatego postępowanie terapeutyczne oprócz leczenia obejmującego naprawę lub wymianę wypełnienia powinno bezwzględnie zawierać instruktaż, motywację i kontrolę pacjenta w zakresie higieny jamy ustnej oraz profilaktykę próchnicy opartą na związkach fluoru. 6, 7, 13, 21 Tym bardziej że udowodniono, że próchnica wtórna wewnętrzna nie rozwija się w warunkach in vivo bez próchnicy wtórnej zewnętrznej, zależnej od płytki bakteryjnej.
Ryc. 7. Uszkodzone wypełnienie w zębie 26, bez oznak aktywnej próchnicy. Wymaga naprawy.
Ryc. 8. Przebarwione wypełnienie w zębie 11. Wymaga wymiany ze względów estetycznych.
Należy pamiętać, że według obecnej wiedzy usunięcie zdrowej tkanki zęba w celu zapobiegania próchnicy nie jest i nigdy nie powinno być uznawane za uzasadnione u pacjentów z niskim ryzykiem próchnicy. Ponieważ skuteczne środki zapobiegania próchnicy są już powszechnie dostępne, rozszerzenie ubytku w celu zapobiegania przed próchnicą nie może być uzasadnione nawet u pacjentów z grupy wysokiego ryzyka. Według najnowszej wiedzy leczenia, wymiany lub naprawy wymaga próchnica wtórna aktywna, ponieważ dochodzi w jej przebiegu do znacznego zakażenia zębiny. Nie ma jednak dotychczas jednoznacznych kryteriów diagnostycznych tego typu próchnicy. W przypadkach szpary brzeżnej ponad 0,4 mm należy ją wstępnie poszerzyć i ocenić, czy występuje w tym miejscu aktywna próchnica wtórna (miękka, wilgotna zębina o różnym zabarwieniu) oraz zbadać jej zasięg. Jeśli stwierdzamy próchnicę i jej zasięg jest duży, należy całkowicie wymienić wypełnienie. Jeśli zmiana jest zlokalizowana, dokonuje się naprawy wypełnienia i szparę można wypełnić amalgamatem, płynnym kompozytem lub innym materiałem (ryc. 7). W każdym przypadku niezbędna jest odpowiednia technika i trzymanie się zasad zakładania materiału określonych przez producenta. Jeśli natomiast zmiana jest mała, diagnoza niepewna, pacjent powinien być odpowiednio poinformowany, zobowiązany do wizyty kontrolnej, a zmiana winna podlegać obserwacji. Należy również uwzględnić sytuację, gdy pacjent żąda wymiany wypełnienia ze względów estetycznych (ryc. 8).
- 1. Moorhead JE. Reasons for replacement of restorations in permanent teeth in general practice. Int Dent J 2000;50:306-61
- 2. Mjör IA. The reasons for replacement and the age of failed restorations in general dental practice. Acta Odontol Scand 1997;55:58-68
- 3. Mjör IA, Moorhead JE. Reasons for replacement of restorations in permanent teeth in general dental practice. Int Dent J 2000;50:361-6
- 4. Glantz PO. The clinical longevity of crown-and-bridge prostheses. In: Anusavice KJ (ed). Quality Evaluation of Dental Restorations: Criteria for Placement and Replacement, Chicago: Quinessence 1989;343-54
- 5. Randow K, Giant PO, Zoger B. Technical failures and some related clinical complications in extensive fixed prosthodontics. Acta Odontol Scand 1986;44:241-55
- 6. Mjor IA. Clinical diagnosis of recurrent caries. JADA 2000;136:1426-33
- 7. Kidd EAM, Beighton D. Prediction of secondary caries around tooth-colored restorations. A clinical and microbiological study. J Dent Res 1996;75:1942-6
- 8. Strużycka I. The oral microbiome. Pol J of Microbiol 2014;63:127-35
- 10. Ozer L. The Relationship Between Gap Size, Microbial Structural Features of Natural Caries in Extracted Teeth With Class II Amalgam Restorations.[thesis]. University of Copenhagen. 1997
- 11. Gonzales-Cabezas C, Li Y. Distribution of cariogenic bacteria in carious lesions around tooth-colored restorstions. Am J Dent 2002;15:248-51
- 12. Mejare B, Mejare I et al. Bacteria beneath composite restorations – a culturing and histobacteriological study. Acta Odontol Scand 1979;37:267-75
- 13. Kidd EAM. Diagnosis of secondary caries. J Dent Educ 2001;65:997-1000
- 14. Totiam P, Gonzales-Cabezas C et al. A new in vitro model to study the relationship of gap size and secondary caries. Caries Res 2007;41:467-73
- 15. Svanberg M, Mjör IA, Orstavik D. Mutans streptoeocci in plaque from margins of amalgam, composite and glassionomer restorations. J Dent Res 1990;69:861-4
- 16. Wallman C, Krasse B. Mutans streptococci in margins of fillings and crowns. J Dent 1992;20:163-6
- 17. Özer L, Thylstrup A. What is known about caries in relation to restorations as a reason for replacement? A review. Adv Dent Res l995;1:594-402
- 18. Hals E, Nernaes Â. Histopathology of in vitro caries developing around silver amalgam fillings. Caries Res 1971;5:58-77
- 19. Kidd EAM. Microleakage: A review. J Dent 1976;4:199-206
- 20. Cox CF. Mieroleakage related to restorative procedures. Proc Finn Dent Soc 1992;88(suppl l):83-93
- 21. Mjor IA, Toffenetti F. Secondary caries. Rest Dent 2000;3:165-79
- 22. Lutz F, Krejci I, Barbaliow F. The importance of proximal curing in posterior composite resin restorations. Quintessence Int 1992;12:605-7
- 23. Mount GJ. Glass-Ionomer cements. Past, present and future Oper Dent 1994;19:82-90
- 24. Duschner H, Ernst CP, Götz H, Rau-scher M. Advanced techniques of micro-analysis and confocal microscopy. Perspectives for studying chemical and structural changes at the interface between restorative materials and the cavity wall. Adv Dent Res 1995;9:355-62
- 25. Eliades G. Chemical and biological properties of glassionomer cements. In: Davidson CL, Mjör IA (eds). Advances in Glass-Ionomer Cements. Chicago: Quintessence 1999;85-101
Następny artykuł: