Co znajdziesz w artykule?
W ostatnich latach obserwowany jest wzrost zainteresowania wykorzystaniem w naukach medycznych jak najmniej kosztownych, a jednocześnie wystarczająco precyzyjnych metod. Z tego powodu coraz większe uznanie w prowadzeniu badań immunohistochemicznych nad nowotworami zyskuje stale unowocześniana metoda mikromacierzy tkankowych (ang. tissue microarray, TMA).[1-7]
W pracy przW pracy przedstawiono obecne poglądy na temat praktycznych aspektów stosowania metody TMA w onkologii. Zwrócono uwagę na nowe możliwości jej wykorzystania w badaniach nad biologią nowotworów.
Spis treści
Metoda TMA w obecnej formie została opisana po raz pierwszy przez Kononena i wsp. w 1998 roku. 7 Jej istotą jest zgromadzenie w pojedynczym bloku parafinowym tkanek z wielu nowotworów, które są następnie oceniane jako pojedynczy preparat mikroskopowy. 8, 9, 10, 11, 12 Chociaż główne założenia metody pozostają niezmienione, to jednak nadal wprowadzane są jej modyfikacje. 6, 13, 14, 15, 16, 17
Metoda TMA jest stosowana z użyciem tych samych protokołów co w klasycznej metodzie
histopatologicznej w badaniach immunohistochemicznych (IHC), do hybrydyzacji fluorescencyjnej in situ (FISH) oraz do hybrydyzacji in situ RNA. 2, 3, 8, 9, 18, 19 Jest szczególnie użyteczna do prowadzenia badań na dużych grupach przypadków i z licznymi przeciwciałami. 20 Nie wykorzystuje się jej w celu ustalenia rozpoznania choroby nowotworowej, jednak jest ona coraz powszechniej stosowana w badaniach nad biologią nowotworów. 9, 11, 15, 20 Zgodność wyników badań wykonywanych klasyczną metodą histopatologiczną i metodą TMA wynosi 88-100 proc. 5, 21
Za najistotniejsze jej zalety uznaje się redukcję kosztów w wyniku zużycia do badań znacząco mniejszych objętości przeciwciał, substancji pomocniczych i liczby szkiełek mikroskopowych, wykonywanie kolejnych odczynów immunohistochemicznych zawsze na precyzyjnie ustalonym i zawsze tym samym fragmencie guza oraz skrócenie czasu potrzebnego do przeprowadzenia badań. 3, 4, 9, 10, 14, 16, 19, 20, 21, 22, 23, 24 W badaniach z wieloma przeciwciałami ograniczenie pola oceny do 1-2 mm zawsze tego samego fragmentu tkanki czyni wyniki porównywalnymi i bardziej wiarygodnymi. 3, 4, 9, 14, 16, 23, 24 Cały proces wytwarzania pojedynczego bloku-biorcy TMA, obejmujący dwukrotną biopsję każdego z 20 bloków-dawców, przenoszenie bioptatów i umieszczanie ich w bloku-biorcy TMA, aż do skompletowania w nim 40 bioptatów o średnicy 2 mm, zajmuje około 2 godzin. 21 Gulmann i wsp. opisali konstrukcję bloku TMA utworzonego z 240 bioptatów o średnicy 0,6 mm w ciągu 6-8 godzin. 11 Dla porównania doświadczonemu technikowi laboratoryjnemu skrojenie preparatów z 80 przypadków klasyczną metodą histopatologiczną i wykonanie w nich odczynów immunohistochemicznych zajmuje około 24 godzin. 11
Wytwarzanie TMA
Podczas wytwarzania mikromacierzy tkankowych wyróżnić można kilka następujących po sobie etapów. W pierwszym z nich z odpowiednich bloków parafinowych zawierających badane tkanki, tzw. bloków-dawców (ang. donor block), wykonywane są preparaty mikroskopowe w celu znalezienia i zaznaczenia na preparacie miejsc najbardziej reprezentatywnych dla danego rozpoznania. 10, 13 W trakcie kolejnego etapu, z miejsc odpowiadających zaznaczonym obszarom na parafinowym bloku-dawcy pobierane są walcowate fragmenty tkankowe o średnicy od 0,6 mm do kilku mm, które następnie są umieszczane w odpowiednich co do średnicy otworach w gotowych blokach-biorcach TMA (ang. recipient block). 7, 13, 18 Bardzo istotne znaczenie ma układ bioptatów w bloku-biorcy TMA, który musi umożliwiać w sposób jednoznaczny identyfikację poszczególnych próbek tkankowych w preparacie mikroskopowym. 14 Pojedynczy blok-biorca TMA może zawierać tkanki od kilkudziesięciu do nawet kilkuset nowotworów. 9, 18 Ostatnim etapem jest zatopienie bloku-biorcy TMA w parafinie. Poprzeczne cięcie tak powstałego TMA pozwala uzyskać do 200 skrawków o grubości 4 µm zawierających tkanki zawsze z tych samych lokalizacji badanych guzów. Uzyskany metodą TMA pojedynczy skrawek umieszczony na szkiełku podstawowym jest barwiony i oceniany jako jeden preparat mikroskopowy. 8, 10, 14, 23 Proces wytwarzania bloku-biorcy TMA oraz przykładowe obrazy mikroskopowe uzyskiwane tą metodą zobrazowano na fot. 1-4.
Ryc. 2. Wytwarzanie mikromacierzy tkankowych: A – technika biopsji bloku-dawcy, B – pobrany bioptat przed umieszczeniem w bloku-biorcy, C – blok-biorca częściowo wypełniony bioptatami z bloku-dawcy, D – gotowy parafinowy blok-biorca (TMA).
Ryc. 3. A – preparat histologiczny z TMA (H+E), B – przykładowe rozmieszczenie poszczególnych bioptatów w bloku-biorcy, C + D – dwumilimetrowe bioptaty z tkankami gruczolakoraka
Ryc. 4. Obrazy mikroskopowe gruczolakoraka endometrium w metodzie TMA: A – bawienie H+E (powiększenie 400 x), B – silna ekspresja receptorów estrogenowych (powiększenie 200 x), C – silna ekspresja receptorów progesteronowych (powiększenie 200 x), D – silna ekspresja Ki67 (powiększenie 200 x).
Kontrowersje dotyczące stosowania metody TMA
Pomimo ciągłego doskonalenia metody TMA, niektóre problemy związane z jej stosowaniem nadal pozostają przedmiotem dyskusji. 3, 4, 6, 7, 25 Liczne kontrowersje towarzyszą reprezentatywności 1-2-mm fragmentów tkankowych w przypadkach nowotworów o zróżnicowanej budowie morfologicznej. 20, 26 Rozwiązaniem tej kwestii może być pobieranie większej liczby biopsji z bloku-dawcy lub zwiększenie średnicy pobieranych fragmentów tkankowych do co najmniej 3 mm. 11, 15, 26 W obu przypadkach ceną za poprawę efektywności metody TMA jest jednak większe uszkodzenie parafinowego bloku-dawcy. Nie można tego faktu bagatelizować, ponieważ w razie konieczności różnicowania wznowy nowotworu z guzem o podobnej strukturze histologicznej u tej samej chorej, przy braku materiału z pierwotnego rozpoznania, porównanie obu nowotworów nie jest możliwe. Obecnie przyjmuje się, że dwa do czterech bioptatów pobranych z bloku-dawcy i przeniesionych do bloku-biorcy TMA wystarczą do oceny morfologii guza nowotworowego. 2, 9, 10, 11, 15, 21, 27 Pogląd ten wydaje się słuszny, jednak przy założeniu, że pobrane bioptaty będą miały odpowiednią średnicę.
Średnica pobieranego bioptatu jest jednym z kluczowych czynników warunkujących reprezentatywność pobranego materiału w metodzie TMA. W sprzedaży komercyjnej znajdują się igły do biopsji parafinowych bloków-dawców o średnicy 0,6-5 mm. 4, 8, 11, 27 W piśmiennictwie dostępne są doniesienia mówiące o stosowaniu różnej średnicy igieł TMA w nowotworach ginekologicznych. 27 Przykładowo, Fowler i wsp. wykonali mikromacierze tkankowe z 0,6-mm bioptatami do oceny ekspresji COX-2 i aromatazy w 336 przypadkach raka endometrium (różne typy histologiczne). 3 Z kolei Kim i wsp., podobnie jak ja, wykorzystali do produkcji TMA igły o średnicy 2 mm w grupie 332 chorych z rakiem szyjki macicy. 2 Ci badacze, którzy preferują bioptaty o średnicy 0,6 mm jako wystarczające do oceny histopatologicznej, wskazują na korzyści ekonomiczne takiego rozwiązania. W pojedynczym tak skonstruowanym bloku TMA można bowiem umieścić nawet do kilkuset bioptatów o średnicy 0,6 mm. 13, 14, 22, 24, 27 Przeciwnicy stosowania tak małych średnic wskazują, że pobrany w ten sposób materiał z bloku-dawcy może nie być reprezentatywny dla całości nowotworu. 20, 26
W piśmiennictwie szeroko dyskutowany jest problem utraty materiału tkankowego podczas wytwarzania TMA. Utrata materiału tkankowego rozumiana jako sytuacja, gdy materiał jest obecny w bloku-dawcy, a nie ma go na preparacie mikroskopowym przygotowanym z bloku-biorcy, jest szacowana przez różnych autorów na 3-30 proc. 4, 26, 28 Hernandez i wsp. wykonali TMA z 317 przypadków raka jelita grubego i odbytnicy z efektywnością wynoszącą 90,2 proc. 29 Podobne wyniki uzyskali inni autorzy. 20 Za jedną z przyczyn utraty materiału tkankowego podczas wytwarzania TMA uznaje się niską jakość parafinowego bloku-dawcy. 4 Uważa się, że jeżeli proces utrwalania tkanek pobranych operacyjnie trwał zbyt długo lub blok był zbyt wysuszony podczas przechowywania, istnieje znaczne ryzyko jego pęknięcia i w konsekwencji – nieodwracalnego uszkodzenia. 30 Z kolei w przypadkach, gdy z bloku pobrano już uprzednio wiele wycinków i grubość tkanki w bloku jest niewielka, ilość materiału tkankowego może być niewystarczająca do uzyskania reprezentatywnego fragmentu tkankowego w TMA. 30, 31
Niektórzy autorzy, w tym Kong i wsp. oraz Kajdacsy-Balla i wsp., proponują w takich przypadkach radiograficzną ocenę grubości bloków parafinowych dla danego przypadku i na tej podstawie dokonanie wyboru najbardziej odpowiedniego bloku-dawcy. 31, 32 Uważa się, że szczególnie gdy skrawki tkankowe są cienkie, ryzyko zbyt głębokiego lub zbyt płytkiego osadzenia bioptatu w bloku-biorcy znacząco wzrasta. 21 Gulmann i wsp. uważają, że gdy bioptaty osadzone są w bloku-biorcy na różnych głębokościach, tj. zbyt głęboko lub zbyt płytko, reprezentatywność tkanek w kolejnych następujących po sobie skrawkach może być różna. 11 Należy zwrócić również uwagę na znaczenie wielkości obszaru zajmowanego przez nowotwór w bloku-dawcy. Gdy nowotwór zajmuje w nim mały obszar, identyfikacja odpowiedniego miejsca na bloku-dawcy i efektywne pobranie z niego materiału do wytworzenia TMA może być trudne lub wręcz niemożliwe. 21
Podsumowanie
Dotychczasowe obserwacje wskazują, że problemy towarzyszące konstrukcji TMA są nadal aktualne. Oznacza to dalsze starania, mające na celu poprawę efektywności metody oraz minimalizację uszkodzeń archiwalnego materiału histopatologicznego. 28 Wprowadzenie gotowych parafinowych bloków-biorców TMA z otworami o średnicach 1-5 mm w miejsce trudnych do wykonania i nietrwałych bloków tworzonych przez samych badaczy było znaczące i potwierdziło, że ten kierunek działań jest możliwy i powinien być kontynuowany.
- 1. Jongen VH, Briët JM, de Jong RA et al. Aromatase, cyclooxygenase 2, HER-2/neu, and p53 as prognostic factors in endometrioid endometrial cancer. Int J Gynecol Cancer 2009;19:670-6
- 2. Kim JY, Lim SJ, Park K et al. Cyclooxygenase-2 and c-erbB-2 expression in uterine cervical neoplasm assessed using tissue microarrays. Gynecol Oncol 2005;97:337-41
- 3. Fowler JM, Ramirez N, Cohn DE et al. Correlation of cyclooxygenase-2 (COX-2) and aromatase expression in human endometrial cancer: tissue microarray analysis. Am J Obstet Gynecol 2005;192:1262-71
- 4. Shergill IS, Shergill NK, Araya M et al. Tissue microarrays: a current medical research tool. Curr Med Res Opin 2004;20:707-12
- 5. Fons G, Hasibuan SM, van der Velden J et al. Validation of tissue microarray technology in endometrioid cancer of the endometrium. J Clin Pathol 2007;60:500-3
- 6. Pick E, McCarthy MM, Kluger HM. Assessing expression of apoptotic markers using large cohort tissue microarrays. Methods Mol Biol 2008;414:83-93
- 7. Kononen J, Bubendorf L, Kallioniemi A et al. Tissue microarrays for high-throughput molecular profiling of tumor specimens. Nat Med 1998;4:844-7
- 8. Voduc D, Kenney C, Nielsen TO. Tissue microarrays in clinical oncology. Semin Radiat Oncol 2008;18:89-97
- 9. Takikita M, Chung JY, Hewitt SM. Tissue microarrays enabling high-throughput molecular pathology. Curr Opin Biotechnol 2007;18:318-25
- 10. Chen W, Foran DJ. Advances in cancer tissue microarray technology: towards improved understanding and diagnostics. Anal Chim Acta 2006;564:74-81
- 11. Gulmann C, O`Grady A. Tissue microarrays: an overview. Curr Diagn Pathol 2003;9:149-54
- 12. Berman JJ, Edgerton ME, Friedman BA. The tissue microarray data exchange specification: a community-based, open source tool for sharing tissue microarray data. BMC Med Inform Decis Mak 2003;3:5
- 13. Mirlacher M, Simon R. Recipient block in TMA technique. Methods Mol Biol 2010;664:37-44
- 14. Tzankov A, Went P, Zimpfer A et al. Tissue microarray technology: principles, pitfalls and perspectives - lessons learned from hematological malignancies. Exp Gerontol 2005;40:737-44
- 15. Tennstedt P, Köster P, Brüchmann A et al. The impact of the number of cores on tissue microarray studies investigating prostate cancer biomarkers. Int J Oncol 2012;40:261-8
- 16. Simon R, Mirlacher M, Sauter G. Immunohistochemical analysis of tissue microarrays. Methods Mol Biol 2010;664:113-26
- 17. Cimbaluk D, Rotmensch J, Scudiere J et al. Uterine carcinosarcoma: immunohistochemical studies on tissue microarrays with focus on potential therapeutic targets. Gynecol Oncol 2007;105:138-44
- 18. Kuefer R, Hofer MD, Gschwend JE et al. Tissue microarrays. High-throughput procedures to verify potential biomarkers. Urologe A 2004;43:659-67
- 19. Lugli A, Tornillo L, Mirlacher M et al. Hepatocyte paraffin 1 expression in human normal and neoplastic tissues: tissue microarray analysis on 3,940 tissue samples. Am J Clin Pathol 2004;122:721-7
- 20. Egervari K, Szollosi Z, Nemes Z. Tissue microarray technology in breast cancer HER2 diagnostics. Pathol Res Pract 2007;203:169-77
- 21. Gottwald L, Sęk P, Piekarski J et al. Construction of a tissue microarray with 2 mm-size cores in endometrioid endometrial cancer – factors affecting quality of the recipient block. Biotech Histochem 2012;87:512-8
- 22. Jongen V, Briët J, de Jong R et al. Expression of estrogen receptor-alpha and -beta and progesterone receptor-A and -B in a large cohort of patients with endometrioid endometrial cancer. Gynecol Oncol 2009;112:537-42
- 23. Sauter G. Representativity of TMA studies. Methods Mol Biol 2010;664:27-35. (241)
- 24. Graham AD, Faratian D, Rae F et al. Tissue microarray technology in the routine assessment of HER-2 status in invasive breast cancer: a prospective study of the use of immunohistochemistry and fluorescence in situ hybridization. Histopathology 2008;52:847-55
- 25. Hoos A, Cordon-Cardo C. Tissue microarray profiling of cancer specimens and cell lines: opportunities and limitations. Lab Invest 2001;81:1331-8
- 26. Kajdacsy-Balla A, Geynisman JM, Macias V et al. Practical aspects of planning, building, and interpreting tissue microarrays: the Cooperative Prostate Cancer Tissue Resource experience. J Mol Histol 2007;38:113-21
- 27. Pallares J, Santacana M, Puente S et al. A review of the applications of tissue microarray technology in understanding the molecular features of endometrial carcinoma. Anal Quant Cytol Histol 2009;31:217-26
- 28. Deng FM, Zhao Y, Kong X et al. Construction of tissue microarrays using pre-existing slides as source of tissue when paraffin blocks are unavailable. J Clin Pathol 2013:DOI:10.1136/jclinpath-2012-201171
- 29. Hernandez BY, Frierson HF, Moskaluk CA et al. CK20 and CK7 protein expression in colorectal cancer: demonstration of the utility of a population-based tissue microarray . Hum Pathol 2005;36:275-81
- 30. Hoos A, Cordon-Cardo C. Tissue microarray profiling of cancer specimens and cell lines: opportunities and limitations. Lab Invest 2001;81:1331-8
- 31. Kong X, Zhao Y, Ksionsk M et al. Radiographic determination of tissue thickness in paraffin blocks: application to the construction of tissue microarrays. Appl Immunohistochem Mol Morphol 2007;15:108-12
- 32. Kajdacsy-Balla A, Geynisman JM, Macias V et al. Practical aspects of planning, building, and interpreting tissue microarrays: the Cooperative Prostate Cancer Tissue Resource experience. J Mol Histol 2007;38:113-21
Następny artykuł:
Bezobjawowy krwinkomocz – diagnostyka w kierunku guzów układu moczowego