Co znajdziesz w artykule?
- Rodzaje ran i powikłań gojenia
- Czynniki etiologiczne zakażeń skóry i tkanki podskórnej
- Antybiotykoterapia oraz oporność na związki przeciwdrobnoustrojowe bakterii izolowanych z ran, owrzodzeń i odleżyn
Spis treści
Problemy w leczeniu zakażonych ran, w tym ran przewlekłych, owrzodzeń i odleżyn, są związane głównie z rosnącym poziomem oporności drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki stosowane powszechnie w praktyce klinicznej. Wielolekooporne drobnoustroje dysponujące mechanizmami oporności na leki przeciwdrobnoustrojowe szerzą się nie tylko w środowiskach szpitalnych, lecz także w placówkach podstawowej opieki medycznej. Powikłania leczenia owrzodzeń i odleżyn najczęściej występują
u pacjentów z cukrzycą, chorobami nowotworowymi oraz zaburzeniami funkcjonowania układu krążenia. W leczeniu infekcji ran, owrzodzeń i odleżyn niezmierne ważne jest prowadzenie właściwej, zgodnej z rekomendacjami antybiotykoterapii, a także bieżące wykonywanie badań mikrobiologicznych wskazujących nie tylko na etiologię zakażeń, ale co najistotniejsze – umożliwiających ustalenie wzorów lekowrażliwości patogenów, a także lokalnej charakterystyki oporności w celu wyboru najlepszej opcji terapeutycznej.
Rany i powikłania gojenia
Rana to miejsce przerwania ciągłości skóry, błon śluzowych i tkanek narządów. Powstaje w następstwie urazów, oparzeń, czynników chemicznych bądź w konsekwencji zabiegów chirurgicznych.
Amerykańskie Centrum Kontroli i Prewencji Chorób (CDC – Centers for Disease Control and Prevention) sformułowało definicję, dzieląc rany na 4 klasy 1 :
- Rany klasy 1 – czyste. Są to rany niezainfekowane, bez stanów zapalnych, głównie zamknięte. W tym wypadku konieczna jest metoda zamkniętego drenażu. Rany te nie docierają do dróg oddechowych, pokarmowych, narządów płciowych ani dróg moczowych.
- Rany klasy 2 – czyste skażone. Docierają do dróg oddechowych, przewodu pokarmowego, narządów płciowych lub dróg moczowych w kontrolowanych warunkach.
- Rany klasy 3 – skażone. Są to świeże, otwarte rany, które mogą powstać w wyniku urazu, zabiegów medycznych lub przeniesienia drobnoustrojów z przewodu pokarmowego do rany.
- Rany klasy 4 – zakażone. Powstają głównie z niewłaściwie pielęgnowanych ran pourazowych. Charakteryzują się zmianami w tkankach, najczęściej są wynikiem obecności drobnoustrojów w narządach wewnętrznych lub w polu operacyjnym.
Zgodnie z rekomendacją Polskiego Towarzystwa Leczenia Ran do oceny ryzyka zakażenia rany służy skala W.A.R., w której rozpatrywane są czynniki związane z charakterystyką samej rany oraz indywidualną sytuacją zdrowotną pacjenta. Bierze się pod uwagę m.in. choroby współistniejące, w tym cukrzycę, chorobę nowotworową, zaburzenia immunologiczne, hematologiczne, urazy, a także wiek pacjenta powyżej 80 lat, problemy higieniczne w środowisku zawodowo-bytowym i hospitalizację powyżej 3 tygodni.
Początkowym okresem w zakażeniu rany jest zasiedlanie i namnażanie się w niej drobnoustrojów – w efekcie dochodzi do kolonizacji krytycznej i rozwoju zakażenia. W zakażeniach ran przewlekłych obserwuje się kilka charakterystycznych objawów, w tym zwiększanie się dolegliwości bólowych i wysięku, zaburzenia procesu gojenia, widoczne zmiany w okalających tkankach oraz krwawienie z ziarniny. Rany przewlekłe powstają głównie na kończynach dolnych w następstwie niewydolności żylnej 2, 3 . Trudności w gojeniu rany można zaobserwować w okresie od 2 do 4 tygodni. Za ranę przewlekłą uważa się taką, w przypadku której proces gojenia trwa od 4 do 12 tygodni, przy czym w praktyce ten czas ulega nierzadko znacznemu wydłużeniu. Infekcje skóry i tkanek miękkich mogą mieć przebieg łagodny, jednak często wymagają hospitalizacji, przeprowadzania zabiegów chirurgicznych i są przyczyną zakażeń ogólnoustrojowych.
Rany przewlekłe podzielono na:
- owrzodzenia kończyn dolnych, najczęściej są to owrzodzenia żylne, ale także owrzodzenia tętnicze oraz niesklasyfikowane
- owrzodzenia w stopie cukrzycowej
- odleżyny
- inne, w tym piodermia zgorzelinowa (pyoderma gangrenosum – rzadko występująca choroba charakteryzująca się nasilonym stanem zapalnym z destrukcją skóry) oraz zgorzel (martwica tkanek powstająca w następstwie zakażenia bakteriami beztlenowymi Clostridioides difficile).
Zgodnie z definicją NPUAP/EPUAP (American National Pressure Ulcer Advisory Panel/European Pressure Ulcer Advisory Panel) odleżyna jest uszkodzeniem skóry i/lub głębszej tkanki. W zależności od stopnia zmiany mogą obejmować skórę i tkankę podskórną, ale także mięśnie, powięzi, ścięgna. Przerwanie ciągłości skóry, zmiany martwicze stanowią wrota dla patogennych drobnoustrojów.
Mikrobiota skóry
Skóra jest skolonizowana przez mikroorganizmy, które wpływają hamująco na patogeny i służą jako dodatkowa bariera biofizyczna zapobiegająca ich inwazji 4, 5 . W mikrobiocie dominują bakterie należące do typów Actinobacteria, Firmicutes, Proteobacteria i Bacteroidetes, głównie z rodzajów Propionibacterium spp., Staphylococcus spp., Micrococcus spp., Corynebacterium spp. i Acinetobacter spp., a także grzyby należące do rodzaju Malassezia. Gruczoły łojowe są zdominowane przez lipofilne gatunki z rodzaju Propionibacterium; w wilgotnym środowisku (np. okolice dołu łokciowego, spód stóp) bytują bakterie Staphylococcus spp. i Corynebacterium spp. Ogólnie rzecz biorąc, na skórze funkcjonuje heterogeniczna społeczność mikroorganizmów o różnych przystosowaniach. Staphylococcus epidermidis wytwarza peptydy, a Cutibacterium acnes krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe o właściwościach przeciwdrobnoustrojowych, które mogą funkcjonować wspólnie i wraz z wrodzonymi mechanizmami obronnymi gospodarza brać udział w utrzymaniu homeostazy 6, 7 . Z drugiej strony zachwianie równowagi mikrobiomu skóry wraz z czynnikami ryzyka leżącymi po stronie gospodarza może przyczyniać się do rozwoju zakażenia w obrębie skóry i tkanki podskórnej.
Czynniki etiologiczne zakażeń skóry i tkanki podskórnej
Bakterie są głównymi czynnikami etiologicznymi zakażeń skóry i tkanek miękkich. Od wielu lat za podstawowe czynniki odpowiedzialne za te zakażenia uważa się gronkowce, przede wszystkim Staphylococcus aureus, w tym szczepy lekooporne, do których należą: metycylinooporny gronkowiec złocisty (MRSA – methicillin-resistant S. aureus), średnio wrażliwy na wankomycynę gronkowiec złocisty (VISA – vancomycin-intermediate S. aureus), oporny na wankomycynę gronkowiec złocisty (VRSA – vancomycin-resistant S. aureus). Należy też zwrócić uwagę na rosnącą liczbę infekcji wywoływanych przez gronkowce koagulazo-ujemne, głównie S. epidermidis, w tym MRSE, a także S. cohnii, S. haemolyticus i gatunki odzwierzęce. Często izolowane są również paciorkowce β-hemolizujące, takie jak Streptococcus pyogenes, oraz bakterie z rodzaju Enterococcus, w tym wankomycynooporne enterokoki (VRE – vancomycin-resistant Enterococci), głównie Enterococcus faecalis 8 . Gronkowce i paciorkowce Streptococcus pyogenes mogą cechować się fenotypem oporności MLS, który odpowiada za oporność na makrolidy, linkozaminy i streptograminy. Co więcej, bakterie oporne na makrolidy często wykazują oporność na penicyliny, tetracykliny, cefalosporyny oraz na trimetoprim/sulfametoksazol.
Czynnikami etiologicznymi zakażeń ran i owrzodzeń są także Gram-ujemne bakterie, głównie z rodziny Enterobacteriaceae, takie jak Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae i Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, Acinetobacter baumannii czy Stenotrophomonas maltophilia, w tym szczepy ESBL-dodatnie; ten mechanizm wiąże się z obecnością β-laktamaz o rozszerzonym spektrum substratowym. ESBL (extended-spectrum beta-lactamases) są enzymami, które hydrolizują wszystkie penicyliny, cefalosporyny (oprócz cefamycyn) oraz monobaktamy. Oporność związana jest również z produkcją karbapenemaz – enzymów hydrolizujących wiązanie β-laktamowe karbapenemów. Bakterie te potrafią ponadto wytwarzać cefalosporynazy, które rozkładają penicyliny, cefalosporyny (oprócz cefalosporyn IV generacji) i monobaktamy. Na początku infekcji w ranie panuje obojętne pH, które w miarę upływu czasu staje się bardziej zasadowe, sprzyjając także rozwojowi drobnoustrojów beztlenowych, takich jak Clostridioides difficile.
Szczegółową listę najczęściej izolowanych patogenów odpowiedzialnych za infekcje ran, owrzodzeń i odleżyn prezentuje tabela 1.

Tabela 1. Wykaz rodzajów drobnoustrojów – czynników etiologicznych zakażeń ran, owrzodzeń i odleżyn
Niepowodzenia w leczeniu zakażeń ran, owrzodzeń i odleżyn, poza opornością na rekomendowane leki przeciwdrobnoustrojowe, wiążą się również ze zdolnością bakterii do tworzenia biofilmu, który jest uważany za główny czynnik wirulencji. Drobnoustroje wytwarzają pozakomórkową substancję polisacharydową – macierz zewnątrzkomórkową, która chroni patogeny przed niekorzystnymi czynnikami środowiska, w tym przed penetracją i działaniem związków przeciwdrobnoustrojowych, a także przed skuteczną obroną układu immunologicznego gospodarza. Macierz zewnątrzkomórkowa uniemożliwia dyfuzję antybiotyku w głąb biofilmu, a lek niszczy tylko drobnoustroje znajdujące się na jego powierzchni. Stwierdzono, że minimalne stężenie hamujące (MIC – minimum inhibitory concentration) i minimalne stężenie bójcze (MBC – minimum bactericidal concentration) dla bakterii żyjących w społeczności biofilmowej są znacznie wyższe niż dla ich form planktonicznych, a farmakodynamika i farmakokinetyka leków również są odmienne w przypadku występowania struktury biofilmu.
Antybiotykoterapia w leczeniu ran, owrzodzeń i odleżyn
Profilaktyczne stosowanie antybiotykoterapii w leczeniu ran nie jest rekomendowane, z wyjątkiem stwierdzonej stopy cukrzycowej. Jest to związane głównie z zagrożeniem selekcji szczepów opornych w ranie. Ogólnoustrojowo rekomenduje się podawanie antybiotyków w przypadku zapalenia tkanki łącznej okalającej ranę, zakażenia kości i stawów, zakażenia mięśni i powięzi, zapalenia naczyń chłonnych oraz zakażeń o charakterze uogólnionym 9 . W leczeniu ran przewlekłych rutynowe wdrażanie antybiotykoterapii ogólnoustrojowej nie prowadzi do przyspieszenia procesu gojenia rany i powinno być uzależnione od wskazań indywidualnych. W przypadku ran pourazowych antybiotykoterapia jest konieczna i powinna zostać zastosowana niezwłocznie.
Do takich sytuacji należą:
- wystąpienie ropy w ranie
- zanieczyszczenie rany wydalinami
- ryzyko wystąpienia zapalenia wsierdzia
- obecność materiałów alloplastycznych
- uszkodzenia tkanki limfatycznej
- rany kąsane na głowie, rękach
- głębokie rany kłute i szarpane
- występowanie chorób współistniejących, takich jak cukrzyca, miażdżyca naczyń obwodowych, zespół nabytego upośledzenia odporności (AIDS – acquired immunodeficiency syndrome)
- immunosupresja
- przedłużający się powyżej 3 godzin czas oczekiwania na zaopatrzenie chirurgiczne.
W przypadku świeżych zakażeń stopy cukrzycowej najczęściej czynnikami etiologicznymi są paciorkowce β-hemolizujące i gronkowiec złocisty. W związku z tym rekomenduje się antybiotyki obejmujące swoim spektrum bakterie Gram--dodatnie, takie jak amoksycylina z kwasem klawulanowym, klindamycyna, lewofloksacyna, cefaleksyna 10 . W umiarkowanych zakażeniach zalecane są ceftriakson, linezolid, daptomycyna, ertapenem, tykarcylina z kwasem klawulanowym. Natomiast w zakażeniach ciężkich, w których występuje flora mieszana, zalecane jest stosowanie imipenemu, piperacyliny z tazobaktamem oraz terapii skojarzonej, w tym zastosowanie lewofloksacyny bądź cyprofloksacyny z klindamycyną lub ceftazydymu z metronidazolem, a wobec MRSA i w zakażeniach kości wankomycyny, daptomycyny, linezolidu lub klindamycyny.
W zakażeniach miejsca operowanego o etiologii gronkowcowej zaleca się jako antybiotyki pierwszego rzutu kloksacylinę, cefazolinę lub cefuroksym, a w przypadku MRSA glikopeptydy lub linezolid. W infekcjach wywoływanych przez bakterie Gram-ujemne rekomendowane są cefalosporyny II i III generacji lub fluorochinolony. Jeżeli podejrzewa się, że czynnikiem zakaźnym są Streptococcus pyogenes lub Clostridium spp., można stosować penicylinę z klindamycyną. W ranach brudnych zaleca się podawanie antybiotyków obejmujących florę beztlenową (linkozamidy, metronidazol, chloramfenikol, penicyliny z inhibitorem, cefoksytyna lub cefotetan).
Oporność na związki przeciwdrobnoustrojowe bakterii izolowanych z ran, owrzodzeń i odleżyn
Zjawisko narastania oporności bakterii Gram-dodatnich na antybiotyki i chemioterapeutyki obserwowane od wielu lat niesie za sobą poważne trudności w terapii zakażeń na całym świecie. Dane z literatury wskazują, że najczęściej z ran, owrzodzeń i odleżyn są izolowane gronkowce złociste, a także gronkowce koagulazo-ujemne, w tym szczepy metycylinooporne (MRCNS – methicyllin-resistant coagulase-negative Staphylococcus). O ile dawnej uważano, że szerzą się one głównie w środowiskach szpitalnych (HA-MRSA – hospital-acquired MRSA), o tyle obecnie wiadomo, że izolowane są również w przypadku zakażeń od pacjentów niehospitalizowanych (CA-MRSA – community-aquired MRSA).
Z danych literaturowych wynika, że wśród gronkowców złocistych, w tym szczepów metycylinoopornych, najwyższą oporność odnotowuje się dla penicyliny – nawet dla ok. 90% izolatów pochodzących z owrzodzeń, a także w przypadku erytromycyny i klindamycyny – w ok. 50%. Wśród opornych szczepów Staphylococcus epidermidis oporność na penicyliny może sięgać 100%, wyższa jest również dla erytromycyny i klindamycyny, sięgając nawet 80%, a dla lewofloksacyny wynosi ok. 30%. Wiele badań potwierdza dużą skuteczność przeciwko bakteriom Gram-dodatnim amikacyny i imipenemu oraz wankomycyny, która wydaje się najskuteczniejszym antybiotykiem 11, 12, 13, 14, 15 . Jednak pojawiły się również szczepy S. aureus średnio wrażliwe na wankomycynę (VISA) oraz szczepy S. aureus oporne na wankomycynę (VRSA) 16 .
Wady wankomycyny, szczególnie słaba penetracja do zajętych procesem zapalnym tkanek, obowiązek monitorowania stężenia oraz nefrotoksyczność, zmusiły do poszukiwań nowej generacji leków. W leczeniu zakażeń skóry i tkanek miękkich dobrą aktywnością charakteryzuje się dalbawancyna – antybiotyk o bardzo szerokim spektrum działania nie tylko wobec gronkowców (S. aureus, w tym MRSA, S. epidermidis, S. lugdunensis), paciorkowców (S. pyogenes, S. agalactiae, grupy S. milleri) i enterokoków, w tym VRE, ale również wobec bakterii beztlenowych z rodzaju Clostridium, Peptostreptococcus i Actinomyces 17 .
Stwierdzono także, że wielolekooporne szczepy E. faecalis mogą wykazywać wysokie wskaźniki oporności na tetracyklinę (blisko 80%), chinuprystynę/dalfoprystynę (w granicach 70%) i gentamycynę (ponad 50%) 11 . Wielolekooporne pałeczki Escherichia coli izolowane z ran, owrzodzeń i odleżyn mogą charakteryzować się bardzo wysokim wskaźnikiem oporności na ampicylinę, ceftriakson, gentamycynę i amoksycylinę z kwasem klawulanowym (nawet do 100%) oraz opornością na fluorochinolony II i III generacji, takie jak cyprofloksacyna i lewofloksacyna (w zakresie 60-70%) 11, 18 . Z danych wynika, że bakterie z rodzaju Klebsiella mogą wykazywać bardzo wysoką oporność na amoksycylinę z kwasem klawulanowym, ceftriakson i ceftazydym. Z kolei szczepy Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, Proteus vulgaris oraz Morganella morganii mogą charakteryzować się wysokim stopniem oporności na imipenem, meropenem, nawet w granicach 80-100%, a także na piperacylinę – w ok. 80%. Z drugiej strony inne badania wskazują, że amikacyna i meropenem są najskuteczniejszymi antybiotykami przeciwko bakteriom Gram-ujemnym w ranach przewlekłych 12 . Izolaty Acinetobacter spp. pochodzące z ran i owrzodzeń mogą również wykazywać zwiększoną oporność na monobaktamy, w tym aztreonam – w ok. 80% 18 . Z kolei w innych badaniach stwierdzono, że szczepy Acinetobacter spp. mogą być oporne w ponad 80% na imipenem 13 .
Kabanangi i inni wykazali, że amikacyna jest dobrą alternatywą w leczeniu infekcji ran i owrzodzeń, oceniając jej skuteczność dla ponad 90% badanych izolatów 18 . W piśmiennictwie wskazuje się, że izolaty kliniczne Clostridioides difficile mogą być w wysokim odsetku oporne na ceftazydym (w ponad 70%) i cefotaksym (w ponad 90%), a także, choć w mniejszym stopniu, na ampicylinę, meropenem, ertapenem, w granicach 40-50% 19 . Spośród chinolonów najwyższą oporność odnotowuje się dla cyprofloksacyny (blisko 70%), kwasu nalidyksowego (ponad 90%), lewofloksacyny (ponad 90%) i moksyfloksacyny (blisko 70%), z tym że w przypadku tego ostatniego chemioterapeutyku w Polsce oporność dochodzi nawet do 100%. Odnotowuje się niewielką liczbę szczepów opornych z gatunku C. difficile na tigecyklinę, tetracyklinę i chloramfenikol. Z kolei obniżoną wrażliwość wobec szczepów klinicznych Clostridium perfringens odnotowuje się dla tetracykliny i cyprofloksacyny. Dane z piśmiennictwa świadczą o bardzo dobrej aktywności metronidazolu, cefaleksyny, ceftriaksonu, cefalotyny, chloramfenikolu, klindamycyny i wankomycyny wobec C. perfringens.
Leczenie zakażeń wywoływanych przez Candida spp. obejmuje terapię miejscową z zastosowaniem chloroheksydyny, klotrimazolu, mikonazolu czy ketokonazolu. W leczeniu doustnym stosuje się amfoterycynę B, itrakonazol, nystatynę. Jednak w literaturze szeroko opisywana jest rosnąca oporność zarówno na azole i echinokandyny, jak i na polieny. Do trudności w leczeniu pacjentów z zakażeniami drożdżakami Candida spp. przyczyniają się również biofilmy i sekrecyjne proteinazy aspartylowe (SAP – secreted aspartyl proteinases), enzymy degradacyjne związane z inwazją. Biofilmy mają wpływ na wyższą oporność zarówno na leki przeciwgrzybicze, jak i na odpowiedź immunologiczną gospodarza.
Podsumowanie
Infekcje owrzodzeń i odleżyn to bardzo złożony problem, wymagający wielokierunkowego spojrzenia i współpracy lekarzy różnych specjalności, a także analityków medycznych i mikrobiologów. Nadużywanie antybiotyków i ich nieprawidłowe stosowanie prowadzi do lawinowego wzrostu oporności i kurczenia się możliwości terapeutycznych. Diagnostyka mikrobiologiczna stanowi nieodzowny element prawidłowego procesu leczenia. Jest to szczególnie ważne w opiece nad pacjentami z nawracającymi zakażeniami, którzy są dotknięci chorobami współistniejącymi, takimi jak cukrzyca, zaburzenia krążenia, w tym u osób z niedoborami immunologicznymi.
Abstract
The problem of antibiotic resistance in the treatment of ulcers and bedsores
Difficulties in the treatment of wounds, ulcers and bedsores are largely related to greater microbial drug resistance. This paper presents the classification of wounds according to the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) and the characteristics of chronic wounds and bedsores. The role of the skin microbiome in preventing skin and subcutaneous tissue infections is discussed. The etiological factors for skin and subcutaneous tissue infections, including wounds, ulcers and bedsores, include mostly staphylococci, e.g. methicillin-resistant strains resistant to all clinically used β-lactams as well as insensitive to many other antibiotics. Both staphylococci and streptococci may include the MLS resistance phenotype which is resistant to macrolides, lincosamines and streptogramins. Moreover, clinical isolates of staphylococci and enterococci may exhibit vancomycin resistance. Bacteria of the family Enterobacteriaceae, responsible for wound infections, ulcers and bedsores, such as Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae and Pseudomonas aeruginosa, Proteus mirabilis, Acinetobacter baumannii or Stenotrophomonas maltophilia, including ESBL-positive strains which are insensitive to all penicillins and cephalosporins. Microbial drug resistance is also associated with the production of carbapenemases and cephalosporinases. Difficulties in therapy are also related to the biofilm produced by microorganisms, which prevents the diffusion of an antibiotic into the biofilm so that the drug only destroys the microorganisms on the surface. Literature data indicate a significant increase in microbial drug resistance based on isolates obtained from skin and subcutaneous tissue infections, including chronic ulcers and bedsores.
- 1. https://www.cdc.gov/nhsn/pdfs/pscmanual/9pscssicurrent.pdf
- 2. Siddiqui AR, Bernstein JM. Chronic Wound Infection: Facts and Controversies. Clin Dermatol 2010;28(5):519-26
- 3. Ortega G, Rhee DS, Papandria DJ, et al. An evaluation of surgical site infections by wound classification system using the ACS-NSQIP. J Surg Res 2012;174:33-8
- 4. Musthaq S, Mazuy A, Jakus J. The microbiome in dermatology. Clin Dermatol 2018;36(3):390-8
- 5. Byrd AL, Belkaid Y, Segre JA. The human skin microbiome. Nat Rev Microbiol 2018;16(3):143-55
- 6. Grice EA, Dawson TL Jr. Host-microbe interactions: Malassezia and human skin. Curr Opin Microbiol 2017;40:81-7
- 7. Barnard E, Li H. Shaping of cutaneous function by encounters with commensals. J Physiol 2017;595(2):437-50
- 8. Bartoszewicz M, Banasiewicz T, Bielecki K. Zasady postępowania miejscowego i ogólnego w ranach/owrzodzeniach przewlekłych objętych procesem infekcji. Forum Zakażeń 2019;10(1):1-30
- 9. Glik J, Kawecki M, Knefel G, i inni. Skojarzone leczenie piorunujących zakażeń tkanek miękkich i skóry. Chir Dypl 2013;5
- 10. Hryniewicz W, Kulig J, Ozorowski T, et al. Stosowanie antybiotyków w wybranych zakażeniach skóry i tkanek miękkich. Narodowy Program Ochrony Antybiotyków (online) 2012; http://antybiotyki.edu.pl/wp-content/uploads/Rekomendacje/rekomendacje-stosowanie-ant-w-wybranych-zak-skory.pdf
- 11. Guan H, Dong W, Lu Y Jiang, et al. Distribution and antibiotic resistance patterns of pathogenic bacteria in patients with chronic cutaneous wounds in China. Front Med 2021;8:609584
- 12. Wong SY, Manikam R, Muniandy S. Prevalence and antibiotic susceptibility of bacteria from acute and chronic wounds in Malaysian subjects. J Infect Dev Ctries 2015;9(9):936-44
- 13. Li L, Dai JX, Xu L, et al. Antimicrobial resistance and pathogen distribution in China. Medicine 2018;97(34):e11977
- 14. Kolar M, Cermak P, Hobzova L, et al. Antibiotic resistance in nosocomial bacteria isolated from infected wounds of hospitalized patients in Czech Republic. Antibiotics 2020;9(6):342
- 15. Vaez H, Beigi F. Antibiotic susceptibility patterns of aerobic bacterial strains isolated from patients with burn wound infections. Germs 2016;6(1):34-6
- 16. Munita JM, Bayer AS, Arias CA. Evolving resistance among Gram-positive pathogens. Clin Infect Dis 2015;61(Suppl 2):S48-57
- 17. Juul JJ, Mullins CF, Peppard WJ, et al. New developments in the treatment of acute bacterial skin and skin structure infections: considerations for the effective use of dalbavancin. Ther Clin Risk Manag 2016;12:225-32
- 18. Kabanangi F, Joachim A, Nkuwi EJ, et al. High Level of Multidrug-Resistant Gram-negative pathogens causing burn wound infections in hospitalized children in Dar es Salaam, Tanzania. Int J Microbiol 2021;2021:6644185
- 19. Khademi F, Sahebkar A. The prevalence of antibiotic-resistant Clostridium species in Iran: a meta-analysis. Patholog Global Haelth 2019;113(2):58-66
- 20. Fisher MC, Alastruey-Izquierdo A, Berman J. Tackling the emerging threat of antifungal resistance to human health. Nat Rev Microb 2022;20(9):557-71
Następny artykuł: