Spis treści
- W SKRÓCIE
- Wprowadzenie
- Interakcja z gospodarzem
- Osiedlanie się
- Biofilmy w zakażeniach górnych dróg oddechowych
- Zapalenie błony śluzowej nosa i zatok przynosowych
- Zapalenie migdałka gardłowego
- Zapalenie migdałków podniebiennych
- Perlak
- Zapalenie ucha środkowego
- Zwalczanie biofilmu. Sposoby stare i nowe
- Wnioski
W SKRÓCIE
Drobnoustroje chorobotwórcze mają łatwy dostęp do górnych dróg oddechowych i choć istnieje kilka barier obronnych, to ostre i przewlekłe zakażenia uszu, nosa i gardła są powszechne i stanowią ogromne wyzwanie dla służby zdrowia. Większość to zakażenia wirusowe o umiarkowanym nasileniu, które ulegają samoograniczeniu; z kolei zakażenia bakteryjne, odpowiedzialne za dużą zachorowalność, mogą być przyczyną
zagrażających życiu następstw. Biofilmy powstają, gdy niezorganizowane organizmy planktonowe zaczynają przylegać do powierzchni. W wielobakteryjnym środowisku biofilmu organizmy wzajemnie oddziałują na siebie na drodze wymiany metabolitów, enzymów i materiału genetycznego. Bakterie tworzące kolonię żyją w warunkach, które w innej sytuacji byłyby niekorzystne. Podejrzewa się, że w zakażeniach górnych dróg oddechowych tworzą się biofilmy, ponieważ posiewy często są ujemne, a zakażenia te często przebiegają w sposób uporczywy, nawracający i bardzo często są oporne na leczenie. Prezentowana praca przedstawia opublikowane w ostatnim czasie dowody na istnienie biofilmów bakteryjnych w zakażeniach górnych dróg oddechowych.
Wprowadzenie
Biofilmy zdefiniowano jako zwartą kolonię komórek bakteryjnych, otoczonych wyprodukowaną przez siebie polimerową macierzą, która przylega do obojętnej lub żywej powierzchni. 1 Jest to preferowana przez bakterie forma życia w środowisku naturalnym. Przyleganie do powierzchni w obecności wody umożliwia bakteriom kolonizację i wzrost. Z macierzystej kolonii uwalniane są planktonowe „deszcze” luźno unoszących się bakterii, dopełniając cykl życiowy biofilmu. 2 Niektóre organizmy tworzą podobną do śluzu pozakomórkową macierz. Rekrutacja wielu gatunków drożdży i grzybów może prowadzić do powstania struktur trójwymiarowych.
Kanały wewnątrz biofilmu, służące do przekazywania substancji odżywczych i usuwania produktów przemiany materii, można porównać do taśm produkcyjnych w fabryce. Po osiągnięciu masy krytycznej bakterie zyskują zdolność złożonej sygnalizacji międzykomórkowej (quorum sensing).
Ukształtowany biofilm jest jak forteca: żyjące w kolonii bakterie mają wspólny zestaw mechanizmów obronnych, dzięki którym mogą uniknąć przeciwbakteryjnego ataku. 3 Biofilmy są oporne na środki dezynfekcyjne i promieniowanie ultrafioletowe. Oporność na leki przeciwbakteryjne jest związana z brakiem penetracji powierzchniowej, powstaniem opornych fenotypów oraz nieprzyjaznym mikrośrodowiskiem wewnątrz biofilmu. Hodowla bakterii (uzyskanie dodatnich posiewów) w tym zmienionym stanie metabolicznym jest również znacznie utrudniona.
Standardowe oznaczenia lekooporności, opra-cowane dla wolno unoszących się organizmów planktonowych, w przypadku biofilmu dają wyniki fałszywie ujemne. Wolno unoszące się bakterie są znacznie bardziej wrażliwe na działanie leków przeciwbakteryjnych. W jednym badaniu minimalne stężenie hamujące wzrost β-laktamazo-ujemnego szczepu Klebsiella pneumoniae wynosiło dla ampicyliny 2 µg/ml w zawiesinie wodnej, podczas gdy ten sam szczep w postaci biofilmu został ledwie naruszony po 4-godzinnej ekspozycji na antybiotyk w stężeniu 5000 µg/ml. 4
Należałoby zatem oczekiwać, że choroby, w których obserwuje się biofilm, będą przebiegać jako choroby przewlekłe, nawracające, z opornością na konwencjonalne leczenie antybiotykowe i brakiem możliwości uzyskania dodatnich wyników posiewów. Podejrzewano m.in., że biofilm powstaje w przebiegu wielu przewlekłych zakażeń, w tym mukowiscydozy. 5
Interakcja z gospodarzem
Górne drogi oddechowe stanowią idealne miejsce do kolonizacji bakteryjnej i wzrostu biofilmu. Jest tam ciepło i wilgotno, żyjące w powietrzu patogeny mają do nich łatwy dostęp.
Górne drogi oddechowe są pokryte błoną produkującą śluz oraz urzęsionym nabłonkiem. Śluz chroni nabłonek przed wysuszeniem, bezpośrednim kontaktem z patogenami i działa jak fizjologiczna pułapka. Bakterie i różne cząstki, zanim przedostaną się do gardła i zostaną połknięte, są wyłapywane w warstwie pokrywającej błonę śluzową. Nienaruszony nabłonek górnych dróg oddechowych jest niezbędny do utrzymania ich w dobrym stanie. W prowadzonym ostatnio badaniu oceniającym dystrybucję biofilmów w bioptatach pobranych z zatok i nosa pacjentów z opornym na leczenie zakażeniem badacze obserwowali prawidłowe komórki urzęsione w próbkach, w których nie było biofilmów. Natomiast w próbkach, w których były biofilmy, komórki urzęsione nie występowały. 6 Poza tym Chun i wsp. 7 wykazali, że zróżnicowany nabłonek dróg oddechowych człowieka może inaktywować cząsteczki quorum sensing Pseudomonas aeruginosa.
Górne drogi oddechowe to immunologiczna linia obrony organizmu przed mikroorganizmami. Łączenie się bakterii z rodziny pneumokoków z komórkami gospodarza inicjuje wewnętrzną nieimmunologiczną odpowiedź. Następuje wstępna stymulacja oczyszczania śluzowo-rzęskowego oraz uwolnienie substancji przeciwbakteryjnych, takich jak laktoferyna, lizozym, peroksydazy, oraz peptydów, takich jak defensyny. Laktoferyna jest wszechobecnym składnikiem ludzkich substancji sekrecyjnych. Chelatacja żelaza stymuluje ruch drgający pałeczki ropy błękitnej (P. aeruginosa), hamujący tworzenie przez bakterie macierzy, co jest konieczne do utworzenia biofilmu. 8
Przystosowanie układu odpornościowego inicjują pojedyncze grudki chłonne w pierścieniu Waldeyera produkujące immunoglobuliny. Komórki osocza w blaszce właściwej również uwalniają sekrecyjną immunoglobulinę A. 9
Objawy zakażenia górnych dróg oddechowych są przede wszystkim konsekwencją odpowiedzi immunologicznej gospodarza na obecność patogenu. Uwolnienie mediatorów zapalnych, obrzęk, wysięk oraz przesiękanie powodują pieczenie, podrażnienie, katar i przekrwienie. W nosie blokada kompleksu ujściowo-przewodowego prowadzi do obturacji i zablokowania zatok. W nosogardle obturacja trąbki Eustachiusza może prowadzić do zapalenia ucha środkowego. W źle wentylowanych jamach obniża się prężność tlenu, a następnie promowany jest fenotyp biofilmu.
Osiedlanie się
Pierwszym etapem formowania się biofilmu jest umocowanie się wolno żyjących bakterii planktonowych na powierzchni. Przejście do następnego etapu wymaga ekspresji setek białek na nowej powierzchni oraz ekspresji wielu lipooligosacharydów.
Większość zakażeń górnych dróg oddechowych ma etiologię wirusową; powszechnie występujące wirusy mogą więc powodować wstępne zaburzenia funkcjonowania błony śluzowej gospodarza, co jest konieczne do zniszczenia bariery obronnej. Zakażenia wirusowe indukują bodźce zapalne, aktywując komórki śródbłonka do zmiany wzoru ekspresji receptorów powierzchniowych. W tym samym czasie zniszczenie komórek urzęsionych oraz osłabienie oczyszczania śluzowo-rzęskowego prowadzi do zatrzymania i gromadzenia wydzieliny. Ułatwia to bakteriom przyleganie oraz transformację do fenotypu biofilmu. W warunkach laboratoryjnych wykazano podwojenie przylegania pneumokoków w hodowli „aktywowanych” czynnikiem wirusowym komórkach płuc. Zwiększone przyleganie było związane z obecnością nowego receptora wodorowęglanowego oraz czynnika aktywującego płytki krwi. 10 Podobne efekty uzyskano po ekspozycji na rinowirusa, wirusa RS (ludzkiego syncytialnego wirusa oddechowego) oraz wirusa grypy.
Greiner i wsp. 11 wykazali zmniejszenie formowania biofilmów przez niesklasyfikowane szczepy Haemophilus influenzae hodowane in vitro w środowisku pozbawionym kwasu sialowego (N-acetyloneuraminowego). Następnie badano szczepy z mutacjami w poszczególnych genach odpowiadających za biosyntezę wodorowęglanów i lipooligosacharydów. Wykazano, że szczep 2019 produkuje biofilm zawierający α2,6-polimer kwasu sialowego, a jego zawartość w lipooligosacharydach zwiększa się wraz z tworzeniem się formy biofilmu. Wytwarzane przez komórki gospodarza sialoglikoproteiny i śluz działają jak receptory, wzmagając adhezję H. influenzae. Usuwanie kwasu sialowego z powierzchni komórek gospodarza przez neuraminidazy innych bakterii i wirusów może być sposobem konkurencji międzygatunkowej w mieszanych zakażeniach oportunistycznych. Niesklasyfikowane szczepy H. influenzae są ważnymi patogenami układu oddechowego u ludzi, szczególnie w ostrym zapaleniu ucha środkowego i wysiękowym zapaleniu ucha środkowego. Również Swords i wsp. 12 wykazali, że składnikiem biofilmów H. influenzae jest kwas sialowy, a do ich powstawania konieczna jest aktywność syntazy CMP-Neu5Ac. Ekspresja kwasu sialowego na powierzchni bakterii może na drodze mimikry do glikoprotein znajdujących się w śluzie i na powierzchni komórek gospodarza stanowić ochronę przeciwko naturalnej odporności.
Inni badacze opisali metodę in vitro pozwalającą badać tworzenie się biofilmów w wydzielinie z ucha środkowego dzieci z jego zapaleniem oraz w plwocinie osób dorosłych z przewlekłą obturacyjną chorobą płuc. 13 Obserwowali oni ekspresję białek ściany komórkowej (P1, P5 oraz P6) podczas wzrostu biofilmu i zmianę ekspresji epitopu na lipopolisacharydach niesklasyfikowanych szczepów H. influenzea. We wczesnym stadium powstawania biofilmu istotne było również tworzenie włosowatych, pustych w środku fimbrii.
Quorum sensing to proces, w którym bakterie, wysyłając i odbierając sygnały zewnątrzkomórkowe lub wytwarzając autoinduktory, wpływają na zachowanie całej populacji. Autoinduktor-2 jest syntetyzowany przez produkt genu luxS, który występuje u wielu gatunków bakterii. 14 Komunikację pomiędzy gatunkami badano ostatnio dla Streptococcus anginosus, powszechnie występującego komensala, którego obecność stwierdza się także w górnych drogach oddechowych. 15 Zniszczenie genu luxS u S. anginosus stworzyło nieformującego biofilmu mutanta.
Biofilmy w zakażeniach górnych dróg oddechowych
Przewlekłe zapalenie błony śluzowej nosa i zatok przynosowych, przewlekłe ropne i nawracające ostre zapalenie ucha środkowego, przetrwałe wysiękowe zapalenie ucha środkowego oraz zapalenie gardła i migdałków podniebiennych należą do przewlekłych nawracających stanów chorobowych; zachorowalność i ryzyko wystąpienia zagrażających życiu powikłań w tych chorobach są znaczne. Materiał diagnostyczny jest czasami trudny do hodowli, a objawy świadczą o słabej skuteczności antybiotykoterapii. W wielu przypadkach wydaje się, że jedynym skutecznym rozwiązaniem jest leczenie chirurgiczne. Coraz więcej dowodów wskazuje jednak, że dużą rolę w utrzymywaniu się zakażeń górnych dróg oddechowych mogą odgrywać biofilmy.
Zapalenie błony śluzowej nosa i zatok przynosowych
Przewlekłe zapalenie blony śluzowej nosa i zatok przynosowych jest w Stanach Zjednoczonych jedną z najczęstszych chorób. Ma ona znaczny wpływ na jakość życia i stanowi duże obciążenie finansowe dla podatników. Obliczono, że 30 mln pacjentów generuje całkowity roczny koszt w wysokości blisko 6 mld dol. 16
Dowodu, że biofilmy rozwijają się w zatokach przynosowych, dostarczyli Perloff i Palmer 17 , wprowadzając P. aeruginosa do zatoki szczękowej królika. Próbki błony śluzowej pobierano i oceniano, wykonując skaningową mikroskopię elektronową (SEM – scanning electron microscope) od 1 do 20 dnia po zakażeniu. We wszystkich 22 próbkach znaleziono wczesne dowody na uszkodzenie nabłonka urzęsionego i następowe formowanie biofilmu. Tylko w jednym przypadku stwierdzono jednak dodatni posiew Pseudomonas. Biofilmów nie obserwowano w próbkach kontrolnych.
Cryer i wsp. 18 zidentyfikowali biofilmy bakteryjne, wykonując skaningową mikroskopię elektronową błony śluzowej pacjentów z opornym na leczenie przewlekłym zapaleniem zatok po nieskutecznym leczeniu przeciwbakteryjnym i endoskopowej operacji zatok. Poza tym przeprowadzono pilotażowe badanie z zastosowaniem skaningowej mikroskopii elektronowej, aby wykazać obecność biofilmów w próbkach tkanek pobranych z puszki sitowej 5 pacjentów poddanych endoskopowej operacji zatok z powodu przewlekłego zapalenia jamy nosowej i zatok przynosowych. 19 W hodowlach ze wszystkich próbek zaobserwowano wzrost nieswoistych bakterii i wykazano uszkodzenie błony śluzowej z uszkodzeniem lub odsłonięciem komórek urzęsionych i kubkowych. 19
Transmisyjna mikroskopia elektronowa (TEM – transmission electron microscopy) wykazała również biofilmy utworzone przez bakterie z rodzaju Pseudomonas w materiale pobranym z zatoki szczękowej u 2 z 4 pacjentów z przewlekłym zapaleniem błony śluzowej nosa i zatok przynosowych. 20 W prospektywnym, kontrolowanym badaniu z zastosowaniem skaningowej mikroskopii elektronowej zaobserwowano formowanie się biofilmu w materiale z nosa i zatok przynosowych u 24 z 30 pacjentów z przewlekłym zapaleniem błony śluzowej nosa i zatok przynosowych. 21 W czterech przypadkach, w których operacja nosa została wykonana z innych przyczyn, nie wykazano formowania się biofilmu ani dowodów na uszkodzenie komórek urzęsionych czy kubkowych. Analizie przekroju z zastosowaniem transmisyjnej mikroskopii elektronowej poddano również podgrupę sześciu próbek, aby potwierdzić obecność bakterii wewnątrz skomplikowanej struktury biofilmu.
Sanderson i wsp. 22 opublikowali prospektywne badanie obserwacyjne pacjentów, którzy przeszli endoskopową operację zatok z powodu przewlekłego zapalenia błony śluzowej nosa i zatok przynosowych. Próbki kontrolne pobierano od zdrowych osób poddawanych plastyce przegrody nosa z powodu izolowanej obturacji nosa bez jakiegokolwiek zakażenia. Aby zidentyfikować bakterie budujące matrycę biofilmu w próbkach z sitowia przedniego, zastosowano hybrydyzację fluorescencyjną in situ i laserową skaningową mikroskopię konfokalną (CLSM – confocal laser scanning microscopy). Biofilm H. influenzae stwierdzono w 14 z 18 przypadków przewlekłego zapalenia zatok; w 4 z nich wykazano również biofilm Streptococcus pneumoniae, a w 3 gronkowca złocistego (Staphylococcus aureus). Nie wykazano biofilmu Pseudomonas, a gatunki biofilmu zidentyfikowane w tym badaniu nie korelowały z hodowanymi z próbek pobranych podczas operacji.
Brak biofilmu u 4 z 18 pacjentów z przewlekłym zapaleniem błony śluzowej nosa i zatok przynosowych przypisano błędowi badania i obserwacji, że biofilmy były ogniskowo rozłożone na powierzchni błony śluzowej. W badaniu tym stwierdzono również biofilmy H. influenzae w 2 z 5 próbek kontrolnych. Pozostałe 3 nie wykazały biofilmu utworzonego przez któryś z badanych gatunków bakterii. Badacze stwierdzili, że biofilmy w grupie kontrolnej były małe, i doszli do wniosku, że do wywołania choroby konieczna jest masa krytyczna bakterii.
Badanie uzasadniło stosowanie hybrydyzacji fluorescencyjnej in situ oraz laserowej skaningowej mikroskopii konfokalnej jako metod wykazywania i typowania biofilmów in vivo, mających oczywistą przewagę nad samą tylko skaningową mikroskopią elektronową. Istnieją jednak ograniczenia tych metod: badacz musi określić, jakich bakterii szuka, ponieważ badania w kierunku wszystkich bakterii obecnych w przewlekłym zapaleniu jamy nosa i zatok przynosowych byłyby zbyt drogie do rutynowego stosowania.
Bendouah i wsp. 23 opisali mniej kosztowną ocenę in vitro, umożliwiającą wykrycie zdolności tworzenia biofilmu przez bakterie w materiale pobranym od osób z przewlekłym zapaleniem błony śluzowej nosa i zatok przynosowych metodą barwienia fioletem krystalicznym. Ci sami badacze zastosowali tę metodę, aby wykazać zależność między zdolnością tworzenia biofilmu in vitro przez P. aeruginosa i S. aureus a jego niekorzystnym dla pacjenta rozwojem po endoskopowej operacji zatok z powodu przewlekłego zapalenia zatok. 24
Zapalenie migdałka gardłowego
Badacze przez długi czas podejrzewali, że migdałki gardłowe stanowią nosowo-gardłowy rezerwuar potencjalnie patogennych bakterii. Okresowe uwalnianie przez biofilm gatunków planktonowych mogłoby wyjaśnić okresy remisji i nawrotu obserwowane w zapaleniu błony śluzowej nosa i zatok przynosowych oraz w zapaleniu ucha środkowego u dzieci, a także pozytywną odpowiedź na chirurgiczne usunięcie migdałków. Średnio 94,9% powierzchni błony śluzowej migdałków gardłowych wyciętych pacjentom z przewlekłym zapaleniem błony śluzowej nosa i zatok przynosowych pokrywa w pełni ukształtowany biofilm, tymczasem w migdałkach usuniętych pacjentom z obturacyjnym bezdechem podczas snu – tylko 1,9%. 25 Inni udokumentowali obecność biofilmów w tkankach pobranych chirurgicznie od pacjentów z nawracającymi zakażeniami górnych dróg oddechowych. Zbadali 32 próbki pochodzące od 28 pacjentów opornych na leczenie przeciwzapalne i przeciwbakteryjne z udowodnioną skutecznością in vitro. Biofilmy obserwowano, wykonując skaningową mikroskopię elektronową we wszystkich próbkach migdałków. 6
Zapalenie migdałków podniebiennych
Nawroty ostrego zapalenia gardła i migdałków podniebiennych są związane ze znaczącą zachorowalnością i ryzykiem wystąpienia zagrażających życiu powikłań. Czasowa skuteczność doustnego leczenia przeciwbakteryjnego, po której następuje kliniczny nawrót, jest frustrująca zarówno dla rodziców małych pacjentów, jak i dla lekarzy.
Krypty na powierzchni migdałków stanowią atrakcyjne miejsce do umocowania się bakterii i wzrostu biofilmu. Chole i Faddis 26 jako pierwsi wykazali, że warunki anatomiczne mają duże znaczenie dla powstania wielobakteryjnych biofilmów w przewlekłym zapaleniu migdałków. Badacze poddali ocenie próbki po tonsilektomii od 19 osób, stosując światło i transmisyjną mikroskopię elektronową (15 usunięto z powodu nawracających epizodów zakażenia, a pozostałe w celu zmniejszenia obturacji spowodowanej przerostem). W 11 z 15 usuniętych z powodu nawrotów zakażeń i w 3 z pozostałych 4 znaleziono biofilmy z gęstą kumulacją różnych bakterii w homogennej amorficznej substancji.
Uzyskane w ostatnim czasie dane za pomocą skaningowej mikroskopii elektronowej wykazały obecność biofilmu H. influenzae w 5 z 8 migdałków podniebiennych usuniętych 4 osobom z utrzymującym się zakażeniem górnych dróg oddechowych. 6 We wcześniejszych badaniach wykazano, że zarówno migdałki hipertroficzne, jak i migdałki z nawracającymi zakażeniami zawierają mieszaną aerobowo-anaerobową florę bakteryjną i nie różnią się zbytnio w wielu aerobowych lub anaerobowych izolatach. 27, 28 Uważa się, że w przerośniętych migdałkach podniebiennych występuje większa liczba bakterii patogennych niż w zdrowych migdałkach, 29 a Gaffney i Cafferkey 30 potwierdzili to, wykonując biopsje cienkoigłowe.
Kuhn i wsp. 31 wykazali, że dominującymi i fakultatywnymi organizmami w próbkach po tonsilektomii są H. influenzae, Neisseria spp., S. aureus i Eikenella corrodens. Wśród dominujących bakterii anaerobowych znajdowały się Fusobacterium spp., Bacteroides i Prevotella melaninogenica. W przerośniętych migdałkach stwierdzono więcej S. aureus i H. influenzae niż w tych, które usunięto z powodu samego tylko nawracającego zapalenia. 31
Chole i Faddis 26 postawili hipotezę, że bakterie mogą pozostawać głęboko w krypcie migdałka, chronione przez biofilm, ale zdolne do uwolnienia endotoksyny i to jest przyczyną przewlekłego zapalenia i hipertrofii. Uwolnienie bakterii było prawdopodobnie związane z zaostrzeniami choroby.
W ostatnim czasie Baldassarri i wsp. 32 badali oporne na makrolidy streptokokowe zapalenia gardła oraz przetrwałe zapalenia gardła, których nie daje się wyjaśnić opornością na antybiotyki. Stwierdzili negatywną korelację między zdolnością do formowania się biofilmu a opornością na makrolidy. Izolaty tworzące biofilmy penetrują mniej skutecznie do komórek nabłonka niż szczepy nietworzące biofilmu. Badacze przypuszczają, że Streptococcus pyogenes wrażliwy na makrolidy tworzy biofilm, aby uniknąć ataku przeciwbakteryjnego i ataku układu odpornościowego. Tymczasem szczepy oporne na makrolidy nie potrzebują biofilmu.
Perlak
Perlaka krótko można opisać jako rozrost nabłonka powstający najczęściej w uchu środkowym. Serowata, zrogowaciała tkanka pęcznieje wewnątrz ściągniętej jak worek błony bębenkowej, niszcząc kości i wywołując przewlekły stan zapalny charakteryzujący się przerywanymi okresami nawrotu z okresową odpowiedzią na leczenie przeciwbakteryjne. Precyzyjne oczyszczenie i chirurgiczne usunięcie zmiany nie gwarantuje wyleczenia.
Chole i Faddis 33 oceniali próbki pobrane z perlaków spontanicznie występujących u człowieka oraz doświadczalnie indukowali powstanie perlaków u myszoskoczków, aby wykazać formowanie się biofilmu. Stwierdzili obecność bakterii Gram-dodatnich oraz Gram-ujemnych w bezkomórkowej macierzy polisacharydowej oraz brak komórek zapalnych w perlakach 21 z 22 myszoskoczków oraz 16 z 24 ludzkich.
P. aeruginosa jest częstym patogenem obecnym w perlaku i wiadomo, że tworzy także biofilmy w innych przewlekłych stanach zapalnych. Badacze oceniali zdolność 12 izolatów otopatogenu P. aeruginosa do tworzenia biofilmów na perlakach. 34 10 szczepów P. aeruginosa wykazywało zwiększone przyleganie do ludzkich keratynocytów, a 11 szczepów – ekspresję produktów quorum sensing, las i rhl. We wszystkich szczepach P. aeruginosa barwienie fioletem krystalicznym wykazało, że tworzą biofilm z takim samym natężeniem jak szczepy laboratoryjne lub większym. Szczepy otopatogenu P. aeruginosa wykazywały także właściwości mukoidu, w tym regulację ujemną ruchu drgającego i zwiększoną produkcję alginatu.
Biofilmy mogą także występować w długotrwałym drenażu związanym z przewlekłym zapaleniem błony bębenkowej, infekcyjnym zapaleniem ucha zewnętrznego, uchem pływaka oraz płynotokiem usznym. Stany te występują często i są trudne do kontroli. W hodowli bakterie te zazwyczaj są oporne na leki przeciwbakteryjne; często też uzyskuje się kolonie grzybów. Zły stan wyrostka sutkowatego zakażonego w wyniku operacji również stanowi istotną przyczynę zachorowalności i powstania biofilmu. 35
Zapalenie ucha środkowego
Ostre ropne zapalenie ucha środkowego jest najczęstszą przyczyną wizyt z dzieckiem u lekarza i najczęstszą przyczyną zastosowania antybiotykoterapii. Mimo braku objawów ostrego zakażenia wysiękowe zapalenie ucha środkowego powoduje przewodzeniowe ubytki słuchu, które – jeśli się utrzymują – wiążą się z opóźnieniem rozwoju mowy i rozwoju behawioralnego. 36
W badaniach wykazano genetyczne powiązania między populacjami pneumokoków pobranymi z płynu ucha środkowego, z ustnej części gardła oraz z migdałków gardłowych u 80% dzieci, którym założono dren z powodu wysiękowego zapalenia ucha środkowego, i u 90% dzieci z nawracającym ostrym zapaleniem ucha środkowego. 37 Te wyniki sugerują, że pneumokoki w wysięku ucha środkowego prawdopodobnie pochodzą z nosogardła, i uważa się, że za występowanie okresowych zaostrzeń ostrego zapalenia ucha środkowego i wysiękowego zapalenia ucha środkowego odpowiedzialny jest biofilm migdałków gardłowych. Odpowiednio hodowane bakterie anaerobowe również dominują, zarówno w zapaleniu ucha środkowego, jak i w przewlekłym zapaleniu błony śluzowej nosa i zatok przynosowych. 38
W większości ostrych zakażeń uszu hodowle mikrobiologiczne są dodatnie, podczas gdy w przypadku przewlekłego wysięku posiewy wydają się jałowe. Brak wzrostu bakterii w płynie z ucha środkowego w przewlekłym wysiękowym zapaleniu ucha środkowego interpretowano jako dowód na to, że ta choroba jest jałowym procesem zapalnym, tylko czasowo powiązanym z wcześniejszym ostrym zapaleniem ucha środkowego.
Pośrednie dowody na to, że wysiękowe zapalenie ucha środkowego ma związek z biofilmem, przedstawili Rayner i wsp., 39 kiedy wykryli obecność bakteryjnego mRNA H. influenzae w wielu jałowych wysiękach z ucha środkowego. Ponieważ okres półtrwania mRNA wynosi tylko kilka minut, a jego synteza przebiega w nienaruszonym organizmie, wykrycie bakteryjnego mRNA uznano za potwierdzenie obecności metabolicznie żywych organizmów. Teorię tę zakwestionowali Peizhong i wsp.; 40 ich zdaniem wysięki mogą hamować degradację nukleazy DNA i RNA po śmierci bakterii, dając fałszywe wyniki.
Powszechnie występujące bakterie udaje się wyhodować tylko u około 25% dzieci z wysiękowym zapaleniem ucha środkowego, metody oparte na reakcji łańcuchowej polimerazy (PCR – polymerase chain reaction) wykazują jednak sekwencyjnie specyficzne DNA i RNA dla tych organizmów w blisko 80% przypadków. 41
Na modelu szynszyli po przezsitowej inokulacji NTHI wykazano, że biofilmy mogą być indukowane do wzrostu na błonie śluzowej ucha środkowego. 42 Dohar i wsp. 43 wykazali obecność biofilmu P. aeruginosa również na błonie śluzowej ucha środkowego makaka jawajskiego po przezbłonowej inokulacji. Nie można było jednak wyjaśnić znaczenia biofilmu w patofizjologii przewlekłego ropnego zapalenia ucha środkowego.
Znajdowano kolejne bezpośrednie dowody na tworzenie się biofilmów na błonie śluzowej ucha środkowego u dzieci, którym założono dreny tympanostomijne z powodu utrzymującego się wysiękowego zapalenia ucha środkowego lub nawracających epizodów ostrego zapalenia ucha środkowego. Do kontroli użyto tkanek pobranych z ucha środkowego zdrowych dzieci, którym wszczepiano implanty ślimakowe. Powstawanie biofilmu obserwowano, wykonując skaningową mikroskopię konfokalną, w 46 próbkach z 50. Płyn wysiękowy, jeżeli był obecny, również analizowano w reakcji łańcuchowej polimerazy i w hodowli mikrobiologicznej, aby potwierdzić istnienie sekwencji kwasu nukleinowego specyficznego dla patogenu oraz wzrost bakterii. 41
Nacięcie błony bębenkowej oraz wprowadzenie drenu należą do najczęstszych zabiegów chirurgicznych wykonywanych w dzieciństwie. Częstym i nieprzyjemnym następstwem jest wyciek z ucha przez dren tympanostomijny. Nieskuteczny drenaż wymaga powtórzenia zabiegu, co jest kosztowne i nieprzyjemne dla pacjenta. Post 42 zastosował skaningową mikroskopię konfokalną i skaningową mikroskopię elektronową, aby potwierdzić obecność biofilmu na drenach tympanostomijnych usuwanych dzieciom z utrzymującym się po wprowadzeniu drenu wyciekiem z ucha.
Zatkanie drenu tympanostomijnego stanowi także niepożądane powikłanie u 25% dzieci leczonych tą metodą. Próby odblokowania zatkanych drenów za pomocą nieototoksycznych antybiotyków w kroplach są kosztowne. Mehta i wsp. 44 wykazali, że obecność biofilmu utworzonego przez bakterie z rodzaju Pseudomonas lub pneumokoki, indukowanego na drenach tympanostomijnych ze stali nierdzewnej, prawie podwaja czas stosowania miejscowo ofloksacyny, potrzebny, by rozpuścić czop śluzowy na modelu ex vivo.
Zwalczanie biofilmu. Sposoby stare i nowe
Zachowanie bakterii w biofilmach wymaga przemyślenia tradycyjnego podejścia do chorób związanych z ich obecnością. Nowe możliwości terapeutyczne znajdziemy prawdopodobnie, podejmując próby wyjaśnienia cyklu życiowego biofilmu. Nadal trwają poszukiwania słabych punktów, trzeba jednak podkreślić znaczenie precyzyjnego oczyszczenia, irygacji i wspomagającego zastosowania leków przeciwbakteryjnych w okresie około- i pooperacyjnym. Ponowne upowietrznienie zatkanych jam (wprowadzenie drenu tympanostomijnego, endoskopowa operacja zatok, tympanomastoidektomia), usunięcie chorych tkanek (adenoidektomia, tonsilektomia) oraz odtworzenie funkcji śluzowo-rzęskowej to wyzwania dla chirurgii funkcjonalnej.
Większość leków przeciwbakteryjnych, zanim wprowadzono je do leczenia, testowano przeciwko czystym kulturom w warunkach laboratoryjnych. Ponowna ocena leków przeciwbakteryjnych oraz opracowanie nowych leków będzie się opierać na testach przeciwko organizmom żyjącym w biofilmie rosnącym powoli lub wcale.
Standaryzowane testy nie nadają się do oceny oporności in vivo. Saginur i wsp. 45 oceniali działanie leków przeciwbakteryjnych i ich połączeń przeciwko klinicznym izolatom Staphylococcus epidermidis i S. aureus (metycylinoopornych i wrażliwych) związanych z zakażeniami implantów. W porównaniu z hodowlami postaci planktonowych hodowle biofilmów były znacznie bardziej oporne na hamujące i bakteriobójcze działanie antybiotyków stosowanych pojedynczo i w połączeniu. Do skutecznych antybiotyków należały rifampicyna, wankomycyna i kwas fusydowy. Badacze sugerują, że testowanie wrażliwości bakterii biofilmu umożliwi opracowanie nowych opcji leczenia kombinacją leków przeciwbakteryjnych. 45
Oceniano również immunomodulacyjne działania makrolidów, poza ich działaniem antybiotykowym. Interferencja z biofilmem może mieć znaczenie w działaniu makrolidów u pacjentów z rozlanym zapaleniem oskrzelików i zwłóknieniem torbielowatym płuc. 46
Kiedy bakterie biofilmu dorastają w konwencjonalnej hodowli laboratoryjnej, ponownie stają się wrażliwe na działanie przeciwbakteryjne. 47 Enzymatyczna degradacja płaszcza mukopolisacharydowego biofilmu (np. alginaza przeciwko alginianom w pseudomonalnej matrycy pozakomórkowej) oraz zastosowanie biosurfaktantów w celu uwolnienia organizmów planktonowych powodują, że są one bardziej wrażliwe na układ odpornościowy gospodarza i leki przeciwbakteryjne. 48
Skuteczne stężenie leków przeciwbakteryjnych przeciwko bakteriom biofilmu zmniejsza się dramatycznie w słabym polu elektrycznym (efekt bioelektryczny). Poza tym wykazano, że ultradźwięki poprawiają penetrację antybiotyków do biofilmu, co powoduje zwiększenie efektu. 47 Przeciwko biofilmom stosowano również leki światłouczulające powodujące uwolnienie aktywnych form tlenu. 49 Obiecujący jest nowy system podawania leków, w tym preparatów aerozolowych, oraz zastosowanie podłoży liposomalnych i polimerowych. 47
Strategie zapobiegania przyleganiu bakterii polegają na hamowaniu pierwszego etapu tworzenia biofilmu. Pneumokoki identyfikują specyficzną sekwencję wodorowęglanów ulegającą ekspresji w komórkach błony śluzowej, aby móc się połączyć i umocować. Wprawdzie można zastosować kilka różnych receptorów, ale przyleganie najlepiej hamuje blokada z analogów. 37
Celem leczenia antyadhezyjnego z zastosowaniem ksylitolu, 5-węglowego alkoholu polihydroksylowego, było zapobieganie 50 i zmniejszenie liczby zaostrzeń 51 w ostrym zapaleniu ucha środkowego. Działanie to polega na blokowaniu adhezji pneumokoków i H. influenzae. Inne badania dotyczące NE-1530, innego przeciwadhezyjnego oligosacharydu, zawiodły w zapobieganiu nawrotom w ostrym zapaleniu ucha środkowego pomimo ich skuteczności w zapobieganiu przylegania pneumokoków w badaniach in vitro. 52 Jak wspominałem wcześniej, Murphy i Kirkham 13 wykryli ekspresję kilku białek podczas tworzenia biofilmu przez NTHI. Ekspresja P5 i P6 mogłaby dowieść zasadności szczepień celowanych.
W górnych drogach oddechowych rezyduje również stabilna populacja miejscowych organizmów komensalnych. Bakterie komensalne rywalizują z patogenami usiłującymi przylgnąć do komórek nabłonkowych. Utrata miejscowej mikroflory z powodu niewłaściwego i przedwczesnego stosowania leków przeciwbakteryjnych w ostrym wirusowym zakażeniu górnych dróg oddechowych może umożliwić kolonizację bardziej patogennym, opornym na antybiotyki szczepom.
Organizmy komensalne z dobrym efektem podawano egzogennie do jelita i dróg moczowych. W badaniu in vivo oceniano ochronną rolę streptokoków alfa hemolizujących (AHS), żyjących w nosogardle, podawanych w postaci aerozolu donosowego w nawracającym zapaleniu gardła i migdałków podniebiennych 53 oraz w ostrym zapaleniu ucha środkowego 54 .
Pojawiły się nadzieje, że aerozole donosowe to bezpieczna i niedroga metoda zapobiegania nawracającemu zapaleniu ucha środkowego, nadal jednak nie udało się tego udowodnić. W kontrolowanym placebo prowadzonym metodą podwójnie ślepej próby badaniu z randomizacją u dzieci z nawracającym zapaleniem ucha środkowego porównywano aerozol donosowy AHS o udowodnionym działaniu hamującym przeciwko trzem najpowszechniejszym patogenom: Streptococcus pneumoniae, niesklasyfikowanym szczepom H. influenzae i Moraxella catarrhalis, z wprowadzaniem drenu tympanostomijnego, nie wykazano jednak różnic w liczbie epizodów nawrotu pomiędzy aerozolami aktywnymi i placebo. 55 Ponowne zainteresowanie wzbudziły ostatnio badania in vitro wykazujące rolę streptokoków alfa-hemolitycznych (szczep Parkera Streptococcus oralis) w zapobieganiu kolonizacji migdałka gardłowego szczepami S. pneumoniae wrażliwymi i opornymi na penicylinę. 56
Wnioski
Zakażenia górnych dróg oddechowych stanowią duży problem ekonomiczny. Są jedną z głównych przyczyn wizyt u lekarza rodzinnego i jedną z najczęstszych przyczyn nieobecności w pracy i szkole. Prowadzone w ostatnim czasie badania dostarczają dowodów na istnienie biofilmów w górnych drogach oddechowych. Nie zawsze można udowodnić zależności przyczynowe, zachowanie biofilmu pozwala jednak w sposób wiarygodny wytłumaczyć kilka charakterystycznych cech zakażeń górnych dróg oddechowych, w tym ich przewlekłego, nawracającego charakteru oraz niepowodzenia konwencjonalnego leczenia antybiotykami. Prace nad przerwaniem cyklu życiowego biofilmu mogą prowadzić do opracowania nowych metod leczniczych.
- 1. Costerton JW, Stewart PS, Greenberg EP: Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections. Science 1999, 284:1318-1322.
- 2. Costerton JW, Geesey GG, Cheng KJ: How bacteria stick. Sci Am 1978, 238:86-95.
- 3. Morris DP, Hagr A: Biofilm: Why the sudden interest? J Otolaryngol 2005, 34(Suppl 2):S56-59.
- 4. Anderl JN, Franklin MJ, Stewart PS: Role of antibiotic penetration limitation in Klebsiella pneumoniae biofilm resistance to ampicillin and ciprofloxacin. Antimicrob Agents Chemother 2000, 44:1818-1824.
- 5. Singh, PK, Schaefer AL, Parsek MR, et al.: Quorum sensing signals indicate that cystic fibrosis lungs are infected with bacterial biofilms. Nature 2000, 407:762-764.
- 6. Galli J, Ardito F, Calo L, et al.: Recurrent upper airway infections and bacterial biofilms. J Laryngol Otol 2006, Epub ahead of print.
- 7. Chun CK, Ozer EA, Welsh MJ, et al.: Inactivation of a Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing signal by human airway epithelia. Proc Natl Acad Sci USA 2004, 101:3587-3590.
- 8. Singh PK, Parsek MR, Greenberg EP, Welsh MJ: A component of innate immunity prevents bacterial biofilm development. Nature 2002, 417:552-555.
- 9. Russell MW, Martin MH, Wu H-Y, et al.: Strategies of immunization against mucosal infection. Vaccine 2000, 19(Suppl 1):S122-S127.
- 10. Cundell D, Masure HR, Tuomanen EI: The molecular basis of pneumococcal infection: a hypothesis. Clin Infect Dis 1995, 21(Suppl 3):S204-S211.
- 11. Greiner LL, Watanabe H, Phillips NJ, et al.: Nontypeable Haemophilus influenzae strain 2019 produces a biofilm containing N-acetylneuraminic acid that may mimic sialylated O-linked glycans. Infect Immun 2004, 72:4249-4260.
- 12. Swords WE, Moore ML, Godzicki L, et al.: Sialylation of lipooligosaccharides promotes biofilm formation by nontypeable Haemophilus influenzae. Infect Immun 2004, 72:106-113.
- 13. Murphy TF, Kirkham C: Biofilm formation by nontypeable Haemophilus influenzae: strain variability, outer membrane antigen expression and role of pili. BMC Microbiol 2002, 2:7.
- 14. Vendeville A, Winzer K, Heurlier K, et al.: Making ‘sense’ of metabolism: autoinducer-2, LuxS and pathogenic bacteria. Nat Rev Microbiol 2005, 3:383-396.
- 15. Petersen FC, Ahmed NA, Naemi A, Scheie AA: LuxSmediated signalling in Streptococcus anginosus and its role in biofilm formation. Antonie Van Leeuwenhoek 2006, 90:109-121.
- 16. Osguthorpe JD: Adult rhinosinusitis: diagnosis and management. Am Fam Physician 2001, 63:69-76.
- 17. Perloff JR, Palmer JN: Evidence of bacterial biofilms on frontal recess stents in patients with chronic rhinosinusitis. Am J Rhinol 2004, 18:377-380.
- 18. Cryer J, Schipor I, Perloff JR, Palmer JN: Evidence of bacterial biofilms in human chronic sinusitis. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec 2004, 66:155-158.
- 19. Ramadan HH, Sanclement JA, Thomas JG: Chronic rhinosinusitis and biofilms. Otolaryngol Head Neck Surg 2005, 132:414-417.
- 20. Ferguson BJ, Stolz DB: Demonstration of biofilm in human bacterial chronic rhinosinusitis. Am J Rhinol 2005, 19:452-457.
- 21. Sanclement JA, Webster P, Thomas J, Ramadan HH: Bacterial biofilms in surgical specimens of patients with chronic rhinosinusitis. Laryngoscope 2005, 115:578-582.
- 22. Sanderson AR, Leid JG, Hunsaker D: Bacterial biofilms on the sinus mucosa of human subjects with chronic rhinosinusitis. Laryngoscope 2006, 116:1121-1126.
- 23. Bendouah Z, Barbeau J, Hamad WA, Desrosiers M: Use of an in vitro assay for determination of biofilm-forming capacity of bacteria in chronic rhinosinusitis. Am J Rhinol 2006, 20:434-438.
- 24. Bendouah Z, Barbeau J, Hamad WA, Desrosiers M: Biofilm formation by Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa is associated with an unfavorable evolution after surgery for chronic sinusitis and nasal polyposis. Otolaryngol Head Neck Surg 2006, 134:991-996.
- 25. Zuliani G, Carron M, Gurrola J, et al.: Identification of adenoid biofilms in chronic rhinosinusitis. Int J Pediatr Otorhinolaryngol 2006, 70:1613-1617.
- 26. Chole RA, Faddis BT: Anatomical evidence of microbial biofilms in tonsillar tissues: a possible mechanism to explain chronicity. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2003, 129:634-636.
- 27. Brook I, Yocum P: Comparison of the microbiology of group A and non-group A streptococcal tonsillitis. Ann Otol Rhinol Laryngol 1988, 97(3 Pt 1):243-246.
- 28. Stjernquist-Desatnik A, Holst E: Tonsillar microbial flora: comparison of recurrent tonsillitis and normal tonsils. Acta Otolaryngol 1999, 119:102-106.
- 29. Richardson MA: Sore throat, tonsillitis, and adenoiditis. Med Clin North Am 1999, 83:75-83, viii.
- 30. Gaffney RJ, Cafferkey MT: Bacteriology of normal and diseased tonsils assessed by fine-needle aspiration: Haemophilus influenzae and the pathogenesis of recurrent acute tonsillitis. Clin Otolaryngol Allied Sci 1998, 23:181-185.
- 31. Kuhn JJ, Brook I, Waters CL, et al.: Quantitative bacteriology of tonsils removed from children with tonsillitis hypertrophy and recurrent tonsillitis with and without hypertrophy. Ann Otol Rhinol Laryngol 1995, 104:646-652.
- 32. Baldassarri L, Creti R, Recchia S, et al.: Therapeutic failures of antibiotics used to treat macrolide-susceptible Streptococcus pyogenes infections may be due to biofilm formation. J Clin Microbiol 2006, 44:2721-2727.
- 33. Chole RA, Faddis BT: Evidence for microbial biofilms in cholesteatomas. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2002, 128:1129-1133.
- 34. Wang EW, Jung JY, Pashia ME, et al.: Otopathogenic Pseudomonas aeruginosa strains as competent biofilm formers. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2005, 131:983-989.
- 35. Males AG, Gray RF: Mastoid misery: quantifying the distress in a radical cavity. Clin Otolaryngol Allied Sci 1991, 16:12-14.
- 36. Bennett KE, Haggard MP, Silva PA, Stewart IA: Behaviour and developmental effects of otitis media with effusion into the teens. Arch Dis Child 2001, 85:91-95.
- 37. Tonnaer EL, Rijkers GT, Meis JF, et al.: Genetic relatedness between pneumococcal populations originating from the nasopharynx, adenoid, and tympanic cavity of children with otitis media. J Clin Microbiol 2005, 43:3140-3144.
- 38. Brook I: Anaerobic infections in children. Microbes Infect 2002, 4:1271-1280.
- 39. Rayner MG, Zhang Y, Gorry MC, et al.: Evidence of bacterial metabolic activity in culture-negative otitis media with effusion. JAMA 1998, 279:296-299.
- 40. Peizhong L, Whatmough K, Birchall JP, et al.: Does the bacterial DNA found in middle ear effusions come from viable bacteria? Clin Otolaryngol Allied Sci 2000, 25:570-576.
- 41. Hall-Stoodley L, Hu FZ, Gieseke A, et al.: Direct detection of bacterial biofilms on the middle-ear mucosa of children with chronic otitis media. JAMA 2006, 296:202-211.
- 42. Post JC: Direct evidence of bacterial biofilms in otitis media. Laryngoscope 2001, 111:2083-2094.
- 43. Dohar JE, Hebda PA, Veeh R, et al.: Mucosal biofilm formation on middle ear mucosa in a nonhuman primate model of chronic suppurative otits media. Laryngoscope 2005, 115:1469-1472.
- 44. Mehta AJ, Lee JC, Stevens GR, Antonelli P: Opening plugged tympanostomy tubes: effect of biofilm formation. Otolaryngol Head Neck Surg 2006, 134:121-125.
- 45. Saginur R, Stdenis M, Ferris W, et al.: Multiple combination bactericidal testing of staphylococcal biofilms from implantassociated infections. Antimicrob Agents Chemother 2006, 50:55-61.
- 46. Schultz MJ: Macrolide activities beyond their antimicrobial effects: macrolides in diffuse panbronchiolitis and cystic fibrosis. J Antimicrob Chemother 2004, 54:21-28.
- 47. Smith AW: Biofilms and antibiotic therapy: is there a role for combating bacterial resistance by the use of novel drug delivery systems? Adv Drug Deliv Rev 2005, 57:1539-1550.
- 48. Bayer AS, Park S, Ramos MC: Effects of alginase on the natural history and antibiotic therapy of experimental endocarditis caused by mucoid Pseudomonas aeruginosa. Infect Immun 1992, 60:3979-3985.
- 49. Wainwright M, Crossley KB: Photosensitizing agents-circumventing resistance and breaking down biofilms: a review. Int Biodeterior Biodegrad 2004, 53:119-126.
- 50. Uhari M, Kontiokari T, Niemela M: A novel use of xylitol sugar in preventing acute otitis media. Pediatrics 1998, 102:879-884.
- 51. Uhari M, Tapiainen T, Kontiokari T: Xylitol in preventing acute otitis media. Vaccine 2000, 19(Suppl 1):S144-S147.
- 52. Ukkonen P, Varis K, Jernfors M, et al.: Treatment of acute otitis media with an antiadhesive oligosaccharide: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet 2000, 356:1398-1402.
- 53. Roos K, Grahn E, Lind L, Holm S: Treatment of recurrent streptococcal tonsillitis by recolonization with alphastreptococci. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1989, 8:318-319.
- 54. Roos K, Hakansson EG, Holm S: Effect of recolonisation with “interfering” alpha streptococci on recurrences of acute and secretory otitis media in children: randomised placebo controlled trial. BMJ 2001, 322:210-212.
- 55. Tano K, Hakansson EG, Holm SE, Hellstrom S: Bacterial interference between pathogens in otitis media and alphahaemolytic Streptococci analysed in an in vitro model. Acta Otolaryngol 2002, 122:78-85.
- 56. Bernstein JM, Haase E, Scannapieco F, et al.: Bacterial interference of penicillin-sensitive and -resistant Streptococcus pneumoniae by Streptococcus oralis in an adenoid organ culture: implications for the treatment of recurrent upper respiratory tract infections in children and adults. Ann Otol Rhinol Laryngol 2006, 115:350-356.
Następny artykuł: