Spis treści
W SKRÓCIE
Pozaszpitalne zakażenia szczepami gronkowca złocistego (Staphylococcus aureus) opornymi na metycylinę (CA-MRSA – community-associated methicillin resistant S. aureus) w wielu regionach świata występują coraz częściej. Większość przypadków to zakażenia skóry i tkanek miękkich. Przebieg choroby może być zróżnicowany – od ropnia skóry aż po piorunujące zakażenie z martwicą tkanek. Szczepy pozaszpitalne
w przeciwieństwie do izolowanych w warunkach szpitalnych charakteryzują się dużą zjadliwością i wytwarzają większą ilość toksyn. Wykazują ponadto zmienną wrażliwość na poszczególne grupy leków przeciwbakteryjnych. Empiryczna antybiotykoterapia u chorych z ropnym zakażeniem skóry i tkanek miękkich lub z ciężkim, zagrażającym życiu zakażeniem nabytym w warunkach pozaszpitalnych powinna obejmować lek aktywny wobec szczepów gronkowca złocistego opornych na metycylinę.
Wprowadzenie
Człowiek jest naturalnym rezerwuarem gronkowca złocistego (Staphylococcus aureus). Bakteria najczęściej kolonizuje skórę, nozdrza przednie, doły pachowe i okolicę odbytu. 1 Średnią częstość kolonizacji nozdrzy przez S. aureus w populacji ogólnej ocenia się na 37%. U większości zdrowych osób nosicielstwo ma charakter przemijający, ale w 20% przypadków jest przewlekłe. W grupie podwyższonego ryzyka nosicielstwa znajdują się chorzy na cukrzycę insulinozależną, leczeni hemodializami i osoby stosujące dożylnie leki lub substancje psychoaktywne. 2
S. aureus jest jednym z najczęstszych patogenów rozpoznawanych u człowieka, cechuje się niepospolitą zdolnością do adaptacji do nowego środowiska i wytwarzania oporności na leki przeciwbakteryjne. Może być przyczyną ropni skóry, zagrażających życiu piorunujących zakażeń skóry i tkanek miękkich, sepsy, ciężkiego zapalenia płuc, zapalenia wsierdzia oraz zespołu wstrząsu toksycznego.
Kiedyś zakażenia wywoływane przez szczepy S. aureus oporne na metycylinę (MRSA – methicillin-resistant S. aureus) obserwowano tylko w ściśle określonych populacjach, np. wśród pacjentów mających kontakt ze służbą zdrowia (szpitalami, ośrodkami opieki długoterminowej, ośrodkami dializ itp.), osób z cewnikami lub innymi przyrządami wprowadzonymi przezskórnie do naczyń krwionośnych. Od ponad pięciu lat obserwuje się znaczny wzrost zakażeń i ognisk epidemii wywołanych przez MRSA u osób, które nie mają bezpośredniego kontaktu z ośrodkami opieki zdrowotnej. Takie zakażenia z uwagi na brak możliwych do zidentyfikowania czynników ryzyka określa się jako pozaszpitalne zakażenia szczepami S. aureus opornymi na metycylinę (community-associated MRSA). Stwierdza się je u zdrowych dzieci, sportowców i więźniów. 3, 4, 5, 6, 7, 8
Zachorowalność i obraz kliniczny
W wielu regionach coraz częściej stwierdza się pozaszpitalne zakażenia MRSA. Większość dotyczy skóry i tkanek miękkich. W Stanach Zjednoczonych szczepy MRSA są najczęściej identyfikowaną przyczyną ropnych zakażeń tych struktur. 9, 10, 11 Objawy choroby bywają różne, poczynając od ropni skóry, a kończąc na piorunującym martwiczym zapaleniu powięzi. 12 Szczepy MRSA wywołują również wiele innych inwazyjnych zakażeń, w tym sepsę, zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych, zapalenie płuc z martwicą oraz zapalenie kości i szpiku. 4, 12, 13, 14
Zakażenia pozaszpitalne mają inną charakterystykę epidemiologiczną, bakteriologiczną i kliniczną niż szpitalne (tab. 1). 15, 16 W badaniu, w którym uczestniczyło ponad 1000 osób z zakażeniem MRSA, chorzy z zakażeniem pozaszpitalnym byli młodsi od osób z zakażeniem szpitalnym (średni wiek 30 lat vs 70 lat; p<0,001). Ponadto w omawianej grupie znalazła się ponadprzeciętna liczba osób rasy innej niż biała (OR 3,13; 95% CI, 2,16-4,32; p<0,001). Pozaszpitalne szczepy MRSA stosunkowo często izolowano ze skóry i tkanek miękkich (OR 4,25; 95% CI, 2,97-5,9; p<0,001), rzadziej natomiast wykrywano je w drogach oddechowych (OR 0,22; 95% CI, 0,09-0,49; p<0,001) i układzie moczowym (OR 0,04; 95% CI, 0-0,24; p<0,001). 15
W warunkach in vitro pozaszpitalne szczepy MRSA nie wykazują wielolekowej oporności charakterystycznej dla szczepów szpitalnych. 1, 15, 17 Profil wrażliwości na leki przeciwbakteryjne ciągle się zmienia i może się różnić w zależności od regionu geograficznego, pozaszpitalne szczepy MRSA cechują się jednak niezmiennie wysoką wrażliwością na połączenie trymetoprymu z sulfametoksazolem oraz na rifampicynę, wankomycynę i linezolid. Ich wrażliwość na klindamycynę lub doksycyklinę czy minocyklinę może być zmienna i zazwyczaj waha się w przedziale 83-95%. Stałą cechą tych bakterii jest oporność na antybiotyki β-laktamowe (w tym cefalosporyny), a ponadto zazwyczaj są one oporne na makrolidy i fluorochinolony. 11, 18 Tabela 2 ilustruje wrażliwość pozaszpitalnych szczepów MRSA na różne leki przeciwbakteryjne w warunkach in vitro. Kluczowa w terapii zakażeń tymi szczepami jest wiedza o częstości występowania i wrażliwości drobnoustrojów na leki na danym obszarze.

Tabela 2. Profil wrażliwości pozaszpitalnych szczepów MRSA na różne leki przeciwbakteryjne w warunkach in vitro*
W Stanach Zjednoczonych najczęstszym szczepem MRSA identyfikowanym za pomocą elektroforezy w polu pulsowym, który wywołuje zakażenia pozaszpitalne, jest USA300. Rzadziej występują USA400 i USA1000. 11, 19 Szczepy te w przeciwieństwie do szczepów izolowanych w warunkach szpitalnych charakteryzują się większą zjadliwością i wytwarzają więcej toksyn. Mają geny kodujące toksynę PVL (leukocydynę Pantona-Valentine’a), która wywołuje martwicę tkanek oraz uszkadza błony komórkowe i leukocyty. 20 Szpitalne szczepy MRSA rzadko mają geny PVL. Szczepy pozaszpitalne z genami kodującymi PVL często wykrywa się u osób z zakażeniami skóry i tkanek miękkich oraz z martwiczym zapaleniem płuc. 14, 15, 21, 22, 23 Wprawdzie przyjmuje się, że toksyna PVL jest odpowiedzialna za zwiększoną zjadliwość szczepów pozaszpitalnych, jednak wiedza na temat jej klinicznego znaczenia wciąż jest niepełna. 20
W wieloośrodkowym prospektywnym badaniu, w którym oceniano częstość występowania zakażeń skóry i tkanek miękkich w populacji dorosłych, MRSA wyizolowano u 59% z 422 pacjentów (zakres 15-74%). 11 Większość zakażeń skóry i tkanek miękkich wywoływanych przez te szczepy przybiera postać samoistnego ropnia, często interpretowanego jako następstwo ukąszenia przez pająka. Obecność ropnia wskazuje, że przyczyną zakażenia jest MRSA. 9, 11 Typowymi cechami klinicznymi zakażenia MRSA są bliski kontakt z zakażonym tą bakterią stwierdzany w wywiadzie (OR 3,4; 95% CI, 1,5-8,1; p<0,05), zakażenie MRSA w wywiadzie (OR 3,3; 95% CI, 1,2-10,1; p<0,05), obecność zmiany przypominającej ukąszenie przez pająka (OR 2,8; 95% CI, 1,5-5,3; p<0,05) oraz stosowanie leków przeciwbakteryjnych w ciągu miesiąca przed zakażeniem (OR 2,4; 95% CI, 1,4-4,1; p<0,05). 11 W żadnej publikacji nie zdefiniowano jednak klinicznych ani epidemiologicznych czynników ryzyka umożliwiających wykluczenie zakażenia MRSA i odróżnienie pacjentów zakażonych pozaszpitalnym szczepem MRSA od tych, u których zakażenie wywołał inny patogen. 10, 11, 24
Zgodnie z definicją kliniczną szpitalne zakażenie MRSA rozpoznaje się wówczas, gdy bakterię wyizolowano po upływie 48 h od przyjęcia do szpitala, a także u osób, które w ciągu ostatniego roku przebywały w szpitalu lub ośrodku opieki długoterminowej, są leczone dializami, są zacewnikowane, korzystają z inwazyjnej aparatury medycznej bądź u których MRSA wykryto wcześniej jako zakażenie szpitalne. 15, 18 Odróżnienie zakażeń wywoływanych przez szczepy szpitalne i pozaszpitalne tylko na podstawie tej definicji powoduje zaniżanie rzeczywistej częstości występowania tych ostatnich. W niedawno zakończonym badaniu Moran i wsp. 11 wykazali, że niemal wszystkie szczepy MRSA wyizolowane z zakażeń skóry i tkanek miękkich były typowe pod względem molekularnym dla zakażeń pozaszpitalnych, choć ponad 25% zakażeń spełniało kryteria klinicznej definicji zakażeń szpitalnych.
Ocena i leczenie
W przeszłości posiew z rany wykonywano stosunkowo rzadko, ponieważ łatwo było przewidzieć, jaki czynnik wywołuje ropne zakażenie skóry i tkanek miękkich oraz jaka jest jego wrażliwość na leki. Z uwagi na coraz częstsze zakażenia pozaszpitalnymi szczepami MRSA więcej lekarzy decyduje się na wykonanie tego badania. Jeśli wiadomo, że te szczepy często występują na danym obszarze, wymaz z ropnia, który pojawił się po raz pierwszy u pacjenta w stabilnym stanie klinicznym, nie jest potrzebny. Zazwyczaj w przypadku tego typu zmian wystarcza nacięcie i drenaż. Posiew z rany powinien być wykonany u pacjentów, u których konieczne jest leczenie przeciwbakteryjne, w szczególności lekami o niepewnej skuteczności, takimi jak klindamycyna, u chorych wymagających hospitalizacji, u osób, u których nie powiodła się poprzednia próba leczenia, i u chorych z nawrotami zakażeń.
U osób z niepowikłanymi zakażeniami skóry i tkanek miękkich rzadko rozwija się sepsa. Posiew krwi należy wykonać u chorych z objawami i cechami przedmiotowymi wskazującymi na uogólnione zakażenie (np. z hipotonią), martwicę tkanek lub zapalenie wsierdzia, jak również u osób, u których przyczyną zakażenia mógł być nietypowy patogen (np. jeśli źródłem zakażenia jest słona lub słodka woda). 25 Ocena radiologiczna (np. zdjęcie przeglądowe lub tomografia komputerowa) jest wskazana w przypadku podejrzenia zapalenia kości i szpiku, odmy podskórnej lub głębokiego zakażenia obejmującego narządy wewnętrzne (np. duży ropień jamy brzusznej z podejrzeniem penetracji do jamy otrzewnej). Ultrasonografia jest przydatna w przypadku niejednoznacznego obrazu klinicznego, zwłaszcza jeśli istnieją wątpliwości co do rozpoznania ropnia. Metoda ta charakteryzuje się większą czułością (98% vs 86%) i swoistością (88% vs 70%) w wykrywaniu głębokich ropni niż badanie kliniczne. 26, 27
Podstawową metodą leczenia ropni skóry jest ich chirurgiczny drenaż. W badaniach nad ropniami skóry wywołanymi przez szczepy pozaszpitalne MRSA, które leczono metodą nacięcia i drenażu, nie stwierdzano znamiennych różnic pod względem odsetka skuteczności między osobami zakażonymi szczepami wrażliwymi i opornymi na przepisywane leki. 11, 28, 29 W prospektywnym badaniu na grupie osób z zakażeniami skóry wywołanymi przez ten szczep niewykonanie drenażu wiązało się z brakiem skuteczności po 30 dniach (p=0,005). 29 Leki przeciwbakteryjne jako uzupełnienie nacięcia i drenażu są wskazane u chorych z ropniem wymagającym leczenia w warunkach szpitalnych, osób z upośledzeniem odporności, chorych z uogólnionymi objawami zakażenia (np. gorączką), chorych, u których ropniowi towarzyszy ciężkie zapalenie skóry, lub chorych z dużymi (≥5 cm), licznymi lub nawracającymi ropniami.
Do doustnych leków przeciwbakteryjnych wykazujących zadowalającą aktywność wobec pozaszpitalnych szczepów MRSA należą trymetoprym skojarzony z sulfametoksazolem, rifampicyna i linezolid. Aby uzyskać większe stężenie trymetoprymu z sulfametoksazolem w surowicy i zmaksymalizować skuteczność, zaleca się podawanie tego preparatu w podwójnej dawce (2 × 960 mg) dwa razy na dobę. 30 Skuteczność trymetoprymu z sulfametoksazolem w leczeniu zakażenia Streptococcus pyogenes jest niewystarczająca, dlatego lek nie powinien być stosowany w monoterapii u osób z zapaleniem skóry. Rifampicyna jest nieprzydatna w monoterapii z uwagi na szybką selekcję szczepów opornych na ten lek. W praktyce klinicznej stosuje się go zazwyczaj w skojarzeniu z połączeniem trymetoprymu z sulfametoksazolem lub innymi lekami. Niemniej wiedza na temat skuteczności takiego postępowania w leczeniu zakażeń skóry i tkanek podskórnych jest niepełna. Rifampicyna lepiej dystrybuuje się do błon śluzowych, dzięki czemu jest skuteczniejsza w eradykacji MRSA kolonizującego jamę nosową, a tym samym prawdopodobnie zmniejsza częstość nawrotów zakażeń. 2, 31
Klindamycyna i długodziałające tetracykliny (np. doksycyklina czy minocyklina) o tyle mogą być alternatywą terapeutyczną, o ile testy antybiotykowrażliwości potwierdzają skuteczność tych leków. 32 W porównaniu z połączeniem trymetoprymu i sulfametoksazolem klindamycyna działa skuteczniej przeciw S. pyogenes i niektórym bakteriom beztlenowym (np. Peptostreptococcus). Niektóre szczepy MRSA charakteryzują się nabytą opornością na klindamycynę, możliwą do wykrycia w teście dyfuzyjnym. 33 Przed leczeniem szczepy te wykazują wrażliwość na klindamycynę w warunkach in vitro. Z kolei powtórzenie badania po ekspozycji na lek wskazuje na oporność bakterii. Skuteczność terapii u osób zakażonych takimi szczepami jest zmienna. 33, 34
W żadnym z dotychczasowych badań nie oceniano udziału pozaszpitalnych szczepów MRSA w wywoływaniu niepowikłanego zapalenia skóry. Ambulatoryjne leczenie łagodnego zapalenia skóry powinno polegać na zastosowaniu cefalosporyny pierwszej generacji lub penicyliny opornej na penicylinazy. 35 Wskazania do zastosowania leku aktywnego wobec MRSA to umiarkowanie ciężkie i ciężkie zakażenia oraz zakażenia rozpoznane w regionach charakteryzujących się częstym występowaniem tych szczepów (wówczas leczenie może polegać np. na podaniu połączenia trymetoprymu z sulfametoksazolem w skojarzeniu z cefalosporyną pierwszej generacji lub penicyliną oporną na penicylinazy, lub na podaniu samej klindamycyny).
W USA spośród dożylnych leków aktywnych wobec MRSA najczęściej stosuje się wankomycynę. Jej powszechne stosowanie może prowadzić do coraz częstszego występowania szczepów S. aureus częściowo lub całkowicie opornych na ten lek. Oporność na wankomycynę mogą wykazywać również enterokoki. Alternatywnymi lekami dożylnymi dopuszczonymi przez amerykańską Food and Drug Administration (FDA) do leczenia zakażeń skóry i tkanek miękkich wywoływanych przez MRSA są linezolid, daptomycyna i tygecyklina. Ponieważ wprowadzono je na rynek stosunkowo niedawno, doświadczenia z ich stosowania w zakażeniach skóry i tkanek miękkich MRSA wciąż są niewielkie.
Linezolid, dostępny zarówno w postaci doustnej, jak i dożylnej, charakteryzuje się dużą aktywnością wobec MRSA w warunkach in vitro. Jego skuteczność jest podobna do wankomycyny. 36 Na gronkowce lek działa bakteriostatycznie. Inną jego cechą jest 100% biodostępność po podaniu doustnym, dobra dystrybucja do tkanek i niewystępowanie krzyżowej oporności z lekami przeciwbakteryjnymi innych grup. 36, 37, 38, 39 W wieloośrodkowym otwartym badaniu z randomizacją i grupą kontrolną przeprowadzonym z udziałem chorych z powikłanymi zakażeniami skóry i tkanek miękkich linezolid okazał się skuteczniejszy od wankomycyny, co wykazano w ramach diagnostyki na wizycie podsumowującej skuteczność leczenia zakażenia MRSA (p<0,001). Różnice między lekami były najbardziej widoczne w przypadku chorych z ropniami i z zakażeniem rany pooperacyjnej. Dłuższe stosowanie linezolidu (>14 dni) może prowadzić do zaburzeń czynności hematopoetycznej szpiku (np. małopłytkowości i niedokrwistości), które ustępują po przerwaniu leczenia. 41
Daptomycyna charakteryzuje się silnym bakteriobójczym działaniem w stosunku do MRSA w warunkach in vitro. Jest podawana dożylnie w pojedynczej dawce dobowej. Samoistna oporność na ten lek występuje rzadko. Do jego działań niepożądanych należy miopatia ze zwiększeniem aktywności fosfokinazy kreatynowej. 42
Tygecyklina, lek z grupy glicylocyklin uzyskiwany przez modyfikację minocykliny, jest antybiotykiem o szerokim zakresie działania. Wykazuje aktywność wobec wielu patogenów tlenowych i beztlenowych, w tym MRSA, enterokoków częściowo lub całkowicie opornych na wankomycynę oraz Escherichia coli i Klebsiella pneumonice wytwarzających β-laktamazę. Jest jednak nieskuteczna w zakażeniach wywoływanych przez Pseudomonas i Proteus. Zasadniczo tygecyklina jest lekiem o działaniu bakteriostatycznym, niemniej na MRSA działa też bakteriobójczo, co wykazano na modelu zwierzęcym (szczury z zapaleniem wsierdzia). Lek jest dostępny wyłącznie w postaci dożylnej, a jego najczęstszymi działaniami niepożądanymi są nudności, wymioty i biegunka. 43
Lekiem, który może okazać się skuteczny w zakażeniach skóry MRSA, jest połączenie chinuprystyny z dalfoprystyną. To pierwszy antybiotyk z grupy streptogramin dostępny w postaci wstrzyknięć. Wykazuje aktywność wobec MRSA w warunkach in vitro, a odsetek oporności nie przekracza 1%. 44 Badania nad skutecznością chinuprystyny z dalfoprystyną w leczeniu zakażeń skóry mają umiarkowaną wartość z powodu małej liczebności badanych grup. Z tego powodu lek nie został dopuszczony przez FDA do leczenia zakażeń MRSA, 45, 46 jest natomiast wskazany w leczeniu powikłanych zakażeń skóry i tkanek miękkich wywoływanych przez wrażliwe na metycylinę S. aureus i S. pyogenes. Najważniejszymi działaniami niepożądanymi leku są zakrzepowe zapalenie żył, bóle mięśni i bóle stawów.
Innymi lekami, których skuteczność w leczeniu zakażeń MRSA jest przedmiotem oceny w badaniach różnych faz, są dalbawancyna (podawana raz w tygodniu), telawancyna, oritawancyna i ceftobiprol (cefalosporyna aktywna wobec MRSA). W badaniu 3 fazy dwie dawki dalbawancyny były równie skuteczne jak linezolid podawany przez 14 dni w leczeniu powikłanych zakażeń skóry i tkanki podskórnej, w tym spowodowanych przez MRSA. 47
Nie prowadzi się żadnych badań nad zakażeniami skóry i tkanek miękkich wywoływanymi przez pozaszpitalne szczepy MRSA w celu opracowania wytycznych, kiedy podjąć decyzję o leczeniu w warunkach szpitalnych. Zalecenia Infectious Diseases Society of America dotyczące postępowania w zakażeniach skóry i tkanek miękkich przewidują możliwość hospitalizacji pacjentów z hipotonią, zwiększonym stężeniem kreatyniny, niskim stężeniem wodorowęglanów, zwiększoną aktywnością fosfokinazy kreatynowej (przekraczającą 2-3-krotnie górną granicę prawidłowych wartości), przesunięciem w lewo w rozmazie krwi obwodowej oraz stężeniem białka C-reaktywnego powyżej 13 mg/l. 48 Większość ropni wystarczy naciąć i wykonać drenaż w warunkach ambulatoryjnych, jednak niektóre, z uwagi na wymiary lub głębokość naciekania, wymagają interwencji chirurgicznej. Pilna ocena i interwencja chirurgiczna odgrywają niebagatelną rolę w przypadku podejrzenia zakażenia z martwicą. Wskazaniem do hospitalizacji są również zakażenia przebiegające z zapaleniem kości i szpiku, septycznym zapaleniem stawów i zapaleniem wsierdzia.
Kontrola i zapobieganie zakażeniom
Chory z podejrzeniem zakażenia wywołanego przez MRSA powinien być hospitalizowany w izolatce i poddany reżimowi sanitarnemu. Zważywszy na coraz częstsze występowanie pozaszpitalnych zakażeń MRSA, przepełnienie oddziałów intensywnej opieki medycznej, ograniczoną liczbę izolatek i długi czas oczekiwania na hospitalizację, takie postępowanie nie zawsze jest możliwe. Pacjentów wypisywanych ze szpitala należy instruować, jak prawidłowo opatrywać rany, w szczególności ropne. Aby zapobiec przeniesieniu zakażenia z człowieka na człowieka, należy unikać korzystania z tych samych ręczników i innych środków higieny osobistej. Trzeba również często myć ręce i przestrzegać podstawowych zasad higieny.
Chorzy z nawracającymi zakażeniami wywoływanymi przez pozaszpitalne szczepy MRSA bądź z zakażeniami występującymi w ściśle zdefiniowanej kohorcie często kontaktujących się ze sobą osób (np. mieszkających wspólnie) powinni być badani pod kątem nosicielstwa MRSA. Odsetek nosicieli w populacji ogólnej nie jest znany. W latach 2001-2002 w USA oceniano go na 0,8% (95% CI, 0,4-1,4%). 49 Nie wszyscy pacjenci z zakażeniem wywołanym przez MRSA są jego nosicielami. Dlatego z myślą o ograniczeniu zjawiska oporności na leki przeciwbakteryjne w populacji ogólnej eradykację MRSA należy przeprowadzić u osób z udokumentowanymi nawrotami zakażenia lub w przypadkach zakażeń występujących w ściśle zdefiniowanej kohorcie często kontaktujących się ze sobą osób. 9, 18
W badaniach nad eradykacją MRSA sprawdzano skuteczność kilku różnych leków, w tym mupirocyny w postaci maści donosowej, kąpieli z chlorheksydyną, jodopowidonu i oleju z drzewa herbacianego. Dwuprocentowa maść donosowa z mupirocyną podawana przez 5 dni okazała się skuteczna w eliminowaniu nosicielstwa MRSA. 50 W kontrolowanym badaniu z randomizacją przeprowadzono 7-dniową terapię obejmującą leczenie miejscowe preparatem mupirocyny, kąpiele z chlorheksydyną oraz stosowanie rifampicyny i doksycykliny. Takie postępowanie okazało się bezpieczne i skuteczne w eradykacji MRSA u pacjentów leczonych w szpitalu. Efekt dekolonizacji utrzymywał się przez co najmniej 3 miesiące. 51
W prospektywnym badaniu obserwacyjnym przeprowadzonym na amerykańskich żołnierzach nosicielstwo pozaszpitalnego MRSA okazało się czynnikiem ryzyka następowych zakażeń tkanek miękkich. 52 W świetle tej zależności wydaje się logiczne, że eradykacja może odgrywać rolę w zapobieganiu kolejnym zakażeniom, co wykazano w przypadku szpitalnych zakażeń na oddziałach intensywnej opieki medycznej. 53 Z drugiej strony nie jest jasne, jaka jest skuteczność dotychczasowych schematów eradykacji w zapobieganiu nawrotom zakażeń skóry wywoływanych przez te szczepy w warunkach ambulatoryjnych.
W USA lekiem najczęściej wykorzystywanym w eradykacji MRSA jest 2-procentowa maść donosowa z mupirocyną, którą stosuje się 2 razy dziennie przez 5 dni. W celu eradykacji patogenu z innych miejsc (np. dołów pachowych i pachwin) przepisuje się zwykle 4-procentowy roztwór chlorheksydyny do przemywania skóry, który stosuje się raz dziennie przez 3-5 dni. Zgodnie z zaleceniami US Centers for Disease Control and Prevention, leki przeciwbakteryjne podawane w zakażeniach układowych w celu eradykacji powinny być zarezerwowane dla pacjentów z objawami zakażenia (leczenie i jednoczesna eradykacja nosicielstwa). 18 Płyny do dezynfekcji rąk mające w składzie zarówno alkohol, jak i chlorheksydynę, są aktywniejsze wobec MRSA niż preparaty odkażające zawierające wyłącznie chlorheksydynę. 54 Cykle eradykacji powinny trwać możliwie jak najkrócej, aby ograniczyć rozwój lekooporności.
Wnioski
W USA i wielu innych częściach świata pozaszpitalne szczepy MRSA są najczęstszą przyczyną ropnych zakażeń skóry i tkanek miękkich. Objawy choroby mogą być różne, od ropni skóry po piorunujące martwicze zapalenie powięzi. Częstą nieprawidłowością jest zmiana przypominająca ukąszenie przez pająka. Kluczową rolę w leczeniu ropnia odgrywa nacięcie i drenaż. Pozaszpitalne szczepy MRSA są zazwyczaj wrażliwe na trymetoprym z sulfametoksazolem, wankomycynę i linezolid. Ich wrażliwość na klindamycynę, doksycyklinę lub minocyklinę jest zmienna. Wszystkie wykazują oporność na antybiotyki β-laktamowe, a większość na makrolidy i fluorochinolony. W warunkach pozaszpitalnych pacjenci z nawracającym zakażeniem MRSA bądź z zakażeniami występującymi w ściśle zdefiniowanej kohorcie często kontaktujących się ze sobą osób (np. mieszkających wspólnie) powinni być poddawani badaniom na nosicielstwo.
- 1. Chambers HF: The changing epidemiology of Staphylococcus aureus? Emerg Infect Dis 2001, 7:178-182.
- 2. Kluytmans J, van Belkum A, Verbrugh H: Nasal carriage of Staphylococcus aureus: Epidemiology, underlying mechanisms, and associated risks. Clin Microbiol Rev 1997, 10:505-520.
- 3. Herold BC, Immergluck LC, Maranan MC et al.: Community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus in children with no identified predisposing risk. JAMA 1998, 279:593-598.
- 4. Fridkin SK, Hageman JC, Morrison M et al.: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus disease in three communities. N Engl J Med 2005, 352:1436-1444.
- 5. Kazakova SV, Hageman JC, Matava M et al.: A clone of methicillin-resistant Staphylococcus aureus among professional football players. N Engl J Med 2005, 352:468-475.
- 6. Lindenmayer JM, Schoenfeld S, O’Grady R et al.: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in a high school wrestling team and the surrounding community. Arch Intern Med 1998, 158:895-899.
- 7. Centers for Disease Control and Prevention: Methicillinresistant Staphylococcus aureus infections in correctional facilities-Georgia, California, and Texas, 2001-2003. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2003, 52:992-995.
- 8. Centers for Disease Control and Prevention: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections among competitive sports participants-Colorado, Indiana, Pennsylvania, and Los Angeles County, 2000-2003. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2003, 52:793-795.
- 9. Frazee BW, Lynn J, Charlebois ED et al.: High prevalence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in emergency department skin and soft tissue infections. Ann Emerg Med 2005, 45:311-320.
- 10. Moran GJ, Amii RN, Abrahamian FM et al.: Methicillinresistant Staphylococcus aureus in community-acquired skin infections. Emerg Infect Dis 2005, 11:928-930.
- 11. Moran GJ, Krishnadasan A, Gorwitz RJ et al.: Methicillin-resistant S. aureus infections among patients in the emergency department. N Engl J Med 2006, 355:666-674.
- 12. Miller LG, Perdreau-Remington F, Rieg G et al.: Necrotizing fasciitis caused by community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Los Angeles. N Engl J Med 2005, 352:1445-1453.
- 14. Centers for Disease Control and Prevention: Four pediatric deaths from community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus—Minnesota and North Dakota, 1997-1999. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 1999, 48:707-710.
- 15. Naimi TS, LeDell KH, Como-Sabetti K et al.: Comparison of community- and health care-associated methicillinresistant Staphylococcus aureus infection. JAMA 2003, 290:2976-2984.
- 16. Fey PD, Said-Salim B, Rupp ME et al.: Comparative molecular analysis of community- or hospital-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 2003, 47:196-203.
- 17. Deresinski S: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: an evolutionary, epidemiologic, and therapeutic odyssey. Clin Infect Dis 2005, 40:562-573.
- 18. Gorwitz RJ, Jernigan DB, Powers JH et al.: Strategies for clinical management of MRSA in the community. Summary of an experts’ meeting convened by the Centers for Disease Control and Prevention, 2006. Publikacja dostępna pod adresem: http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/ar_mrsa_ca.html. Accessed June 19, 2007.
- 19. Diep BA, Gill SR, Chang RF et al.: Complete genome sequence of USA300, an epidemic clone of communityacquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Lancet 2006, 367:731-739.
- 20. Voyich JM, Otto M, Mathema B et al.: Is Panton-Valentine leukocidin the major virulence determinant in communityassociated methicillin-resistant Staphylococcus aureus disease? J Infect Dis 2006, 194:1761-1770.
- 21. Lina G, Piemont Y, Godail-Gamot F et al.: Involvement of Panton-Valentine leukocidin-producing Staphylococcus aureus in primary skin infections and pneumonia. Clin Infect Dis 1999, 29:1128-1132.
- 22. Vandenesch F, Naimi T, Enright MC et al.: Communityacquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus carrying Panton-Valentine leukocidin genes: worldwide emergence. Emerg Infect Dis 2003, 9:978-984.
- 23. Gillet Y, Issartel B, Vanhems P et al.: Association between Staphylococcus aureus strains carrying gene for Panton-Valentine leukocidin and highly lethal necrotizing pneumonia in young immunocompetent patients. Lancet 2002, 359:753-759.
- 24. Miller LG, Perdreau-Remington F, Bayer AS et al.: Clinical and epidemiologic characteristics cannot distinguish community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection from methicillin-susceptible S. aureus infection: a prospective investigation. Clin Infect Dis 2007, 44:471-482.
- 25. Swartz MN: Cellulitis. N Engl J Med 2004, 350:904-912.
- 26. Squire BT, Fox JC, Anderson C: ABSCESS: applied bedside sonography for convenient evaluation of superficial soft tissue infections. Acad Emerg Med 2005, 12:601-606.
- 27. Tayal VS, Hasan N, Norton HJ et al.: The effect of soft-tissue ultrasound on the management of cellulitis in the emergency department. Acad Emerg Med 2006, 13:384-388.
- 28. Lee MC, Rios AM, Aten MF et al.: Management and outcome of children with skin and soft tissue abscesses caused by community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Pediatr Infect Dis J 2004, 23:123-127.
- 29. Miller LG, Quan C, Shay A et al.: A prospective investigation of outcomes after hospital discharge for endemic, community-acquired methicillin-resistant and -susceptible Staphylococcus aureus skin infection. Clin Infect Dis 2007, 44:483-492.
- 30. Gilbert DN, Moellering RC, Eliopoulos GM et al.: The Sanford Guide to Antimicrobial Therapy, edn 37. Sperryville, VA: Antimicrobial Therapy Inc.; 2007.
- 31. Yu VL, Goetz A, Wagener M et al.: Staphylococcus aureus nasal carriage and infection in patients on hemodialysis. Efficacy of antibiotic prophylaxis. N Engl J Med 1986, 315:91-96.
- 32. Ruhe JJ, Monson T, Bradsher RW et al.: Use of long-acting tetracyclines for methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections: case series and review of the literature. Clin Infect Dis 2005, 40:1429-1434.
- 33. Lewis JS 2nd, Jorgensen JH: Inducible clindamycin resistance in Staphylococci: should clinicians and microbiologists be concerned? Clin Infect Dis 2005, 40:280-285.
- 34. Siberry GK, Tekle T, Carroll K et al.: Failure of clindamycin treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus expressing inducible clindamycin resistance in vitro. Clin Infect Dis 2003, 37:1257-1260.
- 35. Phillips S, MacDougall C, Holdford DA: Analysis of empiric antimicrobial strategies for cellulitis in the era of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Ann Pharmacother 2007, 41:13-20.
- 36. Betriu C, Redondo M, Boloix A et al.: Comparative activity of linezolid and other new agents against methicillin-resistant Staphylococcus aureus and teicoplanin-intermediate coagulase-negative staphylococci. J Antimicrob Chemother 2001, 48:911-913.
- 37. Welshman IR, Sisson TA, Jungbluth GL et al.: Linezolid absolute bioavailability and the effect of food on oral bioavailability. Biopharm Drug Dispos 2001, 22:91-97.
- 38. Gee T, Ellis R, Marshall G et al.: Pharmacokinetics and tissue penetration of linezolid following multiple oral doses. Antimicrob Agents Chemother 2001, 45:1843-1846.
- 39. Kutscha-Lissberg F, Hebler U, Muhr G, et al.: Linezolid penetration into bone and joint tissues infected with methicillin-resistant staphylococci. Antimicrob Agents Chemother 2003, 47:3964-3966.
- 40. Weigelt J, Itani K, Stevens D et al.: Linezolid versus vancomycin in treatment of complicated skin and soft tissue infections. Antimicrob Agents Chemother 2005, 49:2260-2266.
- 41. Gerson SL, Kaplan SL, Bruss JB et al.: Hematologic effects of linezolid: summary of clinical experience. Antimicrob Agents Chemother 2002, 46:2723-2726.
- 42. Carpenter CF, Chambers HF: Daptomycin: another novel agent for treating infections due to drug-resistant grampositive pathogens. Clin Infect Dis 2004, 38:994-1000.
- 43. Stein GE, Craig WA: Tigecycline: a critical analysis. Clin Infect Dis 2006, 43:518-524.
- 44. Jones RN, Ballow CH, Acar J, et al.: World-wide evaluation of quinupristin-dalfopristin (Q/D) (Synercid): Antimicrobial activity directed against resistant Grampositive pathogens: Report from the global SMART study [abstract 1262]. 39th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Washington, DC: American Society for Microbiology; 1999:263.
- 45. Drew RH, Perfect JR, Srinath L, et al.: Treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections with quinupristin-dalfopristin in patients intolerant of or failing prior therapy. J Antimicrob Chemother 2000, 46:775-784.
- 46. Nichols RL, Graham DR, Barriere SL, et al.: Treatment of hospitalized patients with complicated gram-positive skin and skin structure infections: two randomized, multicenter studies of quinupristin/dalfopristin versus cefazolin, oxacillin or vancomycin. Synercid Skin and Skin Structure Infection Group. J Antimicrob Chemother 1999, 44:263-273.
- 47. Jauregui LE, Babazadeh S, Seltzer E et al.: Randomized, double-blind comparison of once-weekly dalbavancin versus twice-daily linezolid therapy for the treatment of complicated skin and skin structure infections. Clin Infect Dis 2005, 41:1407-1415.
- 48. Stevens DL, Bisno AL, Chambers HF, et al.: Practice guidelines for the diagnosis and management of skin and soft-tissue infections. Clin Infect Dis 2005, 41:1373-1406.
- 49. Kuehnert MJ: Prevalence of Staphylococcus aureus nasal colonization in the United States, 2001-2002. J Infect Dis 2006, 193:172-179.
- 50. Harbarth S, Dharan S, Liassine N et al.: Randomized, placebo- controlled, double-blind trial to evaluate the efficacy of mupirocin for eradicating carriage of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother 1999, 43:1412-1416.
- 51. Simor AE, Phillips E, McGeer A et al.: Randomized controlled trial of chlorhexidine gluconate for washing, intranasal mupirocin, and rifampin and doxycycline versus no treatment for the eradication of methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonization. Clin Infect Dis 2007, 44:178-185.
- 52. Ellis MW, Hospenthal DR, Dooley DP et al.: Natural history of community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonization and infection in soldiers. Clin Infect Dis 2004, 39:971-979.
- 53. Sandri AM, Dalarose MG, Ruschel de Alcantara L et al.: Reduction in incidence of nosocomial methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infection in an intensive care unit: role of treatment with mupirocin ointment and chlorhexidine baths for nasal carriers of MRSA. Infect Control Hosp Epidemiol 2006, 27:185-187.
- 54. Kampf G, Jarosch R, Ruden H: Limited effectiveness of chlorhexidine based hand disinfectants against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). J Hosp Infect 1998, 38:297-303.